CC BY-NC-ND 4.0 · Geburtshilfe Frauenheilkd 2021; 81(10): 1145-1153
DOI: 10.1055/a-1545-4279
GebFra Science
Review/Übersicht

WHO-Klassifikation 2020 für Tumoren des unteren weiblichen Genitales

Artikel in mehreren Sprachen: English | deutsch
Anne Kathrin Höhn
1   Arbeitsgruppe Mamma, Gynäko- & Perinatalpathologie, Institut für Pathologie, Universitätsklinikum Leipzig AöR, Leipzig
,
Christine E. Brambs
2   Frauenklinik, Kantonsspital, Luzern, Schweiz
,
Grit Gesine Ruth Hiller
1   Arbeitsgruppe Mamma, Gynäko- & Perinatalpathologie, Institut für Pathologie, Universitätsklinikum Leipzig AöR, Leipzig
,
Doris May
3   Pathologisches Institut der Ludwig-Maximilians-Universität München, München
,
Elisa Schmoeckel
3   Pathologisches Institut der Ludwig-Maximilians-Universität München, München
,
Lars-Christian Horn
1   Arbeitsgruppe Mamma, Gynäko- & Perinatalpathologie, Institut für Pathologie, Universitätsklinikum Leipzig AöR, Leipzig
› Institutsangaben
 

Zusammenfassung

In der WHO-Klassifikation 2020 steht die Unterscheidung von HPV-assoziierten und HPV-unabhängigen Plattenepithelkarzinomen des unteren weiblichen Genitales im Vordergrund. Die Unterscheidung der HPV-Assoziation ersetzt das Grading nicht, für welches jedoch kein Gradingsystem empfohlen wird. Auch bei der VIN erfolgt die Trennung nach HPV-(p16-)Assoziation. HPV-unabhängige Adenokarzinome (AC) der Cervix uteri sind prognostisch ungünstiger. Als Surrogatmarker für eine HPV-Assoziation gilt der immunhistochemische Nachweis von p16. Beim HPV-assoziierten AC der Cervix uteri erfolgt die prognostisch relevante Angabe des sog. Silva-Patterns.


#

Einleitung

Die WHO-Klassifikation der Tumoren des weiblichen Genitales ist im 4. Band der 5. Auflage aufgrund neuer histomorphologischer und insbesondere molekularpathologischer Daten 2020 grundlegend überarbeitet worden und hat sich in ihrem Umfang im Vergleich zu 2013 verdoppelt. Die WHO-Klassifikation wird vorrangig aufgrund neuer (molekular-)pathologischer Daten erstellt. Therapeutisch und diagnostisch relevante Daten, soweit vorhanden, fließen aber in jedem Fall mit ein. Die „blauen Bücher der WHO“ stellen eine wichtige Grundlage für einen weltweit einheitlichen diagnostischen Standard dar. In Deutschland wird in den Leitlinien/Empfehlungen der AWMF (Arbeitsgemeinschaft der Wissenschaftlichen Medizinischen Fachgesellschaften e. V.) darauf hingewiesen, dass die derzeit aktuelle WHO-Klassifikation für die pathologische Befunderstellung heranzuziehen ist. Die Verbindlichkeit der diagnostischen histopathologischen Standards und Terminologie der jeweils aktuellen WHO-Klassifikation ist in allen Leitlinien zu gynäkologischen Malignomen mit dem Verb „soll“ als höchstem Grad der Empfehlung belegt. Während Kriterien zur Diagnosestellung und Terminologie in der WHO-Klassifikation abgebildet werden, dienen zur Stadieneinteilung, also der Ausbreitung der gynäkologischen Tumoren neben der TNM-Klassifikation maligner Tumoren auch die FIGO-Klassifikation (Fédération Internationale de Gynécologie et dʼObstétrique).

Die wesentlichen, klinisch relevanten, Veränderungen der aktuellen WHO-Klassifikation sind im Folgenden für das untere weibliche Genitale praxisrelevant zusammengefasst.


#

Tumoren der Vulva

Bei den vulvären intraepithelialen Neoplasien (VIN) ist die Unterscheidung HPV-assoziiert und HPV-negativ beibehalten worden. Die HPV-assoziierte VIN entspricht nomenklatorisch der Low- (VIN 1) sowie High-Grade-SIL (VIN 2 und 3; [Abb. 1] und [2]).

Zoom Image
Abb. 1 Klinikopathologische Charakteristika der WHO-Klassifikation 2020 der vulvären Präkanzerosen [1], [2], [3], [4], [12], [14].
Zoom Image
Abb. 2 Präkanzerosen (VIN) und Karzinom der Vulva. a HPV-assoziierte VIN (usual VIN; u-VIN), b und c nicht keratinisierendes, HPV-assoziiertes Plattenepithelkarzinom der Vulva mit plumpem Invasionsmuster und p16-Positivität (sog. block-staining; s. Text), d HPV-unabhängige VIN (d-VIN), e und f keratinisierendes Plattenepithelkarzinom der Vulva mit netzigem Invasionsmuster und aberranter p53-Expression (s. Text).

Für die VIN ohne HPV-Nachweis wird der Terminus HPV-unabhängige VIN eingeführt [1], [2]; [Abb. 1], die eine variable Morphologie zeigt:

  • Die differenzierte VIN mit horizontalem Wachstum (d-VIN) wird als Vorläuferläsion einem aggressiveren,

  • die differenzierte exophytische VIN-Läsion (DEVIL) einem weniger aggressiven (keratinisierenden) Plattenepithelkarzinom und die

  • vulväre Akanthose mit abnormer Differenzierung (VAAD) dem verrukösen Karzinom als Vorläufer- bzw. Risikoläsion zugeordnet [2], [3].

Dabei ist zu beachten, dass sich überschneidende Läsionen vorkommen können [1], [2], [4]. Aufgrund morphologischer Ähnlichkeiten bzw. Überschneidungen [3] werden DEVIL und VAAD auch unter dem Oberbegriff einer atypischen Ausreifung des vulvären Plattenepithels (vulvar aberrant maturation; VAM; [4]) zusammengefasst ([Abb. 1]), ein Terminus, der in der WHO-Klassifikation nicht enthalten ist.

Ungeachtet einer derzeit (noch) fehlenden diagnostischen und therapeutischen Relevanz [5], [6], erfolgt aufgrund einer differenten Pathogenese ([Abb. 1] und [2]) in der neuen WHO-Klassifikation eine Unterscheidung in HPV-assoziierte und HPV-unabhängige Plattenepithelkarzinome, wobei diese Angabe im Befundbericht von der WHO empfohlen wird. Das Verhältnis HPV-unabhängiger zu HPV-assoziierten Plattenepithelkarzinom wird mit 0,60 bis 0,83 angegeben [7].

Ungeachtet klinikopathologischer Unterschiede ([Tab. 1]) ist mit einer Fehlerrate von 20 – 30% [8], [9] rein HE-morphologisch eine Unterscheidung HPV-assoziierter und HPV-unabhängiger (p53-assoziierter) Plattenepithelkarzinome nicht verlässlich möglich [2], [4]. Der von Nooij et al. [10] postulierte dritte pathogenetische Ansatz (s. u.; [Tab. 1]; [5], [11]) ist aufgrund einer derzeit noch unzureichenden Datenlage in der WHO-Klassifikation nicht berücksichtigt.

Tab. 1 Pathogenetisch basierte klinikopathologische Charakteristika von Plattenepithelkarzinomen der Vulva [2], [4], [5], [6], [10], [11], [20], [42].

HPV-Assoziation

HPV-unabhängig

unklar

p16+/p53

p16/p53+

p16/p53

Häufigkeit

40%

50 – 60%

20%

Alter

40. – 60. Lebensjahr

50. – 70. Lebensjahr

60. – 70. Lebensjahr

Präkanzerose

VIN 2/3 (H-SIL)

HPV-unabhängige VIN (d-VIN,? VAAD,? DEVIL)

? (d-VIN-/VAAD-like?)

Ätiopathogenese

HPV High-Risk-Infektion

p53-Alteration

? (NOTCH-1-/HRAS-/PIK3CA-Mutation?)

Biomarker-Expression

p16-positiv (block staining)

p53-aberrantes Färbemuster

p16-negativ/p53 wt

Histologie (Heller et al. 2020)

nicht keratinisierend (ca. 66%)

keratinisierend (80 – 90%)

keratinisierend/
nicht keratinisierend

inguinale Lymphknotenmetastasen

30%

40%

30%

Radio(chemo)sensitivität

i. d. R. sensitiv

weniger sensitiv

mglw. weniger sensitiv

Prognose

besser

schlechter

intermediär

  • Lokalrezidiv (Nooij et al. 2017) [10]

5,3%

22,6%

16,3%

  • 2-Jahres-DFS (Woelber et al. 2021) [11]

64%

47%

60%

  • 5-Jahres-DSS (Barlow et al. 2020) [5]

89%

75%

83%

  • Gesamtüberleben (Woelber et al. 2021) [11]

82%

70%

75%

Eine starke nukleäre und zytoplasmatische p16-Reaktivität in der Immunhistochemie (sog. block-staining; [12]; [Abb. 2 c]) spricht für eine HPV-Assoziation und wird von der WHO als „reliable (although not perfect)“ Surrogatmarker definiert (WHO 2020, [4], [13]). Eine p53-Immunhistochemie kann die Diagnostik bei den VIN und vulvären Plattenepithelkarzinomen präzisieren [4] ([Abb. 2 f]), da Färbemuster definiert wurden, die gut mit zugrunde liegenden Mutationen korrelieren [7], [14].

Ist eine Unterscheidung mittels p16-Immunhistochemie (und/oder molekularem HPV-Nachweis) bzw. p53 im Tumor nicht möglich, ist gemäß WHO die Angabe Plattenepithelkarzinom NOS „acceptable“ ([Abb. 5]). Explizit wird von der WHO darauf hingewiesen, dass molekulare Untersuchungen (z. B. HPV-Nachweis in situ) für die Diagnostik nicht indiziert sind.

Zoom Image
Abb. 5 Klinikopathologische Charakteristika der WHO-Klassifikation 2020 von Plattenepithelkarzinomen des unteren weiblichen Genitales [1], [5], [6], [8], [9], [11], [12], [13], [14], [17], [18], [20], [24], [27], [44].

Radio(chemo)therapeutisch behandelte Patientinnen mit p16-positiven Plattenepithelkarzinomen zeigen eine statistisch signifikant bessere Ansprechrate als p53-assoziierte Karzinome [15], [16], [17], [18].

Bei Patientinnen mit sehr unterschiedlichem therapeutischen Ansatz ist mittlerweile akzeptiert, dass p16-positive im Vergleich zu p53-positiven Karzinomen eine bessere Prognose zeigen [5], [6], [11], [19]. Die Studie von McAlpine et al. [20] weist darauf hin, dass Patientinnen mit p53-positiven Tumoren von einem radikaleren chirurgischen Vorgehen profitieren. Erste molekulare Studien zeigen, dass Vulvakarzinome mit einer p53-Mutation und zusätzlicher PIK3CA-Komutation eine besonders ungünstige Prognose haben [7]. Die offenbar existente dritte pathogenetische Gruppe der p16/p53-Tumoren steht prognostisch zwischen den p16-positiven und p53-aberranten Vulvakarzinomen [5], [11] ([Tab. 1]). Ob das prognostisch günstige Low-Grade-Plattenepithelkarzinom mit verruköser Morphologie ein morphologisches Endspektrum der p16/p53-Tumoren darstellt [7], ist unklar.

Angaben zum Grading sind in der WHO-Klassifikation nicht enthalten. Nach Ansicht der Autoren ersetzt die HPV-Assoziation (i. e. p16 „block-positivity“; [12]) das Grading derzeit (noch) nicht. Sollte ein Grading zur Dokumentation bzw. für das DRG-System relevant sein, kann dieses in Analogie zum bisherigen Vorgehen anhand des Ausmaßes der Keratinisierung erfolgen.

Unklar ist, warum das verruköse Karzinom ([Abb. 3]) nicht mehr in der WHO-Klassifikation aufgeführt ist, wohl aber in rezenten Übersichtsarbeiten [2], [4]. Auch molekulare Untersuchungen nehmen zu diesem Tumortyp separat Stellung [7]. Die VAAD wird aufgrund nachgewiesener HRAS- und PIK3CA-Mutationen als Vorläuferläsion des verrukösen Karzinoms diskutiert [3].

Zoom Image
Abb. 3 Verruköses Karzinom der Vulva: exophytisch-verruköses Wachstum gut differenzierter Plattenepithelien mit oberflächlicher Parakeratose und scharfer, nur fokal infiltrativer Begrenzung (Pfeil) zum darunterliegenden Stroma.

Die WHO-Klassifikation weist explizit auf die Möglichkeit des immunhistochemischen HER2-Nachweises beim Morbus Paget hin. Eine Metaanalyse von 713 Patientinnen ergab, dass in 30% eine HER2-Expression und für die Steroidhormonrezeptoren ER, PR und AR in 13%, 8% bzw. 40% eine Positivität vorliegt [21], die als mögliches therapeutisches Target dienen könnte.


#

Tumoren der Vagina

Bei den vaginalen intraepithelialen Neoplasien (VaIN; [Abb. 4 a]) und Adenokarzinomen gibt es keine Änderungen.

Zoom Image
Abb. 4 Präkanzerosen und Karzinom der Vagina. a HPV-assoziiertes Präkanzerose der Vagina (VAIN 3), b keratinisierendes Plattenepithelkarzinom der Vagina mit geringer peritumoraler Desmoplasie und fehlender peritumoraler Entzündung, c nicht keratinisierendes Plattenepithelkarzinom der Vagina mit hochgradiger peritumoraler Entzündung.

Auch beim Plattenepithelkarzinom der Vagina gibt es derzeit keine therapeutische Relevanz in Bezug auf den HPV-Nachweis [22], dennoch empfiehlt auch hier die WHO deren Unterscheidung ([Abb. 5]).

Allgemein ist die Mehrzahl der vaginalen Plattenepithelkarzinome HPV-assoziiert, insbesondere bei nicht keratinisierender Morphologie ([Abb. 4 b]) und Tumorlokalisation im oberen und mittleren Drittel (sog. Müller-Scheide). Bei distal lokalisierten Plattenepithelkarzinomen handelt es sich um sog. Introituskarzinome, ausgehend vom Urogenitalsinus (sog. Sinus-Scheide; [23], [24]), die bei fehlender HPV-Assoziation oft keratinisierende Plattenepithelkarzinome sind ([Abb. 4 c]).

Auch beim Vaginalkarzinom wird von der WHO darauf hingewiesen, dass molekulare Untersuchungen (z. B. HPV-Nachweis in situ) für die Diagnostik nicht indiziert sind.

Angaben zum Grading sind in der WHO-Klassifikation nicht enthalten. Nach Ansicht der Autoren ersetzt die HPV-Assoziation (i. e. p16 „block-positivity“; [12] das Grading derzeit (noch) nicht. Sollte ein Grading zur Dokumentation bzw. für das DRG-System relevant sein, kann dieses in Analogie zum bisherigen Vorgehen anhand des Ausmaßes der Keratinisierung erfolgen.


#

Tumoren der Cervix uteri

Bei den plattenepithelialen zervikalen intraepithelialen Neoplasien (CIN) gibt es keine Änderungen.

Beim Adenocarcinomata in situ (AIS) werden verschiedene Varianten HPV-assoziierter und das nicht HPV-assoziierte gastrische AIS (g-AIS) unterschieden. Die SMILE (Stratified mucin-producing intraepithelial lesion) als Subtyp der AIS wird nicht mehr als eigenständige Entität aufgeführt.

Epitheliale Präkanzerosen und Karzinome der Cervix uteri sind mehrheitlich HPV-assoziiert [25].

Um eine einheitliche Nomenklatur zu gewährleisten, wird auch hier von der WHO eine Unterteilung der Plattenepithelkarzinome wie beim Vulva- und Vaginalkarzinom vorgenommen ([Abb. 5]).

Für die sehr seltenen HPV-negativen Plattenepithelkarzinome [26], [27] ist keine Präkanzerose bekannt.

Auch bei den Plattenepithelkarzinomen der Cervix uteri gelingt eine rein HE-morphologische Unterscheidung beider Formen nicht, daher wird von der WHO die p16-Immunhistochemie empfohlen, aber auch hier die Diagnose Plattenepithelkarzinom-NOS akzeptiert ([Abb. 5]), da keine therapeutischen bzw. prognostischen Unterschiede bestehen. Die WHO-Klassifikation konstatiert zum Grading, dass kein etabliertes Gradingsystem existiert. Nach Ansicht der Autoren ersetzt die HPV-Assoziation (i. e. p16 „block-positivity“; [12]) das Grading derzeit (noch) nicht. Sollte ein Grading zur Dokumentation bzw. für das DRG-System relevant sein, kann dieses in Analogie zum bisherigen Vorgehen anhand des Ausmaßes der Keratinisierung erfolgen.

Auch beim Adenokarzinom (AC) der Cervix uteri erfolgt eine Unterteilung anhand der HPV High-Risk-Assoziation. HPV-negative AC zeigen eine signifikant ungünstigere Prognose [28], [29], [30].

Daher gibt es die bisherige diagnostische Kategorie AC-NOS in der neuen WHO-Klassifikation nicht mehr.

Gleiches gilt für das (primäre) seröse AC der Cervix uteri, bei denen es sich fast ausschließlich um endometriale oder isthmische Endometriumkarzinome mit zervikaler Beteiligung handelt [29], [31].

Die WHO-Klassifikation hat die auch in der 2021 überarbeiteten Version der S3-Leitlinie Zervixkarzinom [32] aufgeführte „International Endocervical Adenocarcinoma Classification“ (IECC; [28], [29]) übernommen ([Abb. 6]).

Zoom Image
Abb. 6 Einteilung von Adenokarzinomen der Cervix uteri entsprechend der WHO-Klassifikation 2020 [1], [28], [29], [31], [32], [37]. Kleines Bild: starke p16-Positivität eines AC usual type.

Eine HPV-Analyse ist für die Diagnosestellung nicht notwendig [1]. Beim Nachweis einer „block-type“-Reaktivität [1] ([Abb. 6]) ist p16 ein verlässlicher Surrogatmarker für die HPV-Assoziation. In sehr seltenen Fällen kann eine p16-Hypermethylierung zu einer (falsch) negativen Immunhistochemie führen [33], die für die CIN 3 mit rund 5% angegeben wird [4], [34]. Bedeutsam ist auch die Auswahl eines geeigneten p16-Klons für die verlässliche p16-Bestimmung [35]. Die p16-Reaktivität ist an alten Paraffinblöcken bzw. unzureichend fixiertem Gewebe unzuverlässig [31], [36]. Wichtig ist, dass auch HPV-unabhängige AC (z. B. gastrische) eine p16-Positivität zeigen können [37]. Die Interpretation der p16-Immunhistochemie muss hier im Kontext mit der HE-Morphologie erfolgen.

Neu in die WHO-Klassifikation aufgenommen wurde die auf architektonischen Kriterien basierende, prognostisch-relevante Klassifikation (HPV-assoziierter) AC, das sog. Silva-Pattern ([Tab. 2]).

Tab. 2 Häufigkeit und prognostische Relevanz des sog. Silva-Patterns beim HPV-assoziierten Adenokarzinom der Cervix uteri [43].

Häufigkeit

pelvine Lymphknotenmetastasierung

FIGO-Stadium I

FIGO-Stadium II – IV

Rezidivrate

Pattern A

20,7%

0%

100%

0%

0%

Pattern B

25,6%

4,4%

100%

0%

1,1%

Pattern C

53,7%

23,8%

83%

17%

23,7%

Diese unterscheidet zwischen prognostisch günstigen, non-destruktiv wachsenden Pattern-A- und den destruierend wachsenden Pattern-B- und -C-Karzinomen. Die Abgrenzung zwischen Pattern-A-AC und dem AIS kann HE-morphologisch schwierig sein (k = 0,23; [38]).

Das endometrioide AC der Endozervix stellt fast in allen Fällen eine muzindepletierte Variante des HPV-assoziierten ACs dar. Endometrioide Endometriumkarzinome mit Zervixinfiltration und benigne Läsionen sind immunhistochemisch abzugrenzen.


#

Epithelial-mesenchymale Tumoren

Bei den bisher in der WHO-Klassifikation aufgeführten Adenofibromen der Cervix uteri handelt es sich de facto um benigne Endometrium- bzw. Zervixpolypen mit ungewöhnlicher Morphologie [39], [40] oder aber um Adenosarkome mit „low-grade Morphologie des Stromas“ ([Abb. 7]), bei denen immunhistochemische Untersuchungen differenzialdiagnostisch hilfreich sind [41].

Zoom Image
Abb. 7 Adenosarkom des Uterus: blattartiges Wachstum des Tumors mit sehr zellarmem Stroma (*), das eine diskrete Akzentuierung der Zelldichte unter dem oberflächlichen Epithel zeigt (Pfeile) mit blander Zytologie.

#
#
  • References/Literatur

  • 1 Lokuhetty D, White VA, Watanabe R. Female genital Tumours. 5th ed. Lyon: Internal Agency for Research on Cancer (IARC); 2020
  • 2 Singh N, Gilks CB. Vulval squamous cell carcinoma and its precursors. Histopathology 2020; 76: 128-138
  • 3 Watkins JC. Human Papillomavirus-Independent Squamous Lesions of the Vulva. Surg Pathol Clin 2019; 12: 249-261
  • 4 Heller DS, Day T, Allbritton JI. et al. Diagnostic Criteria for Differentiated Vulvar Intraepithelial Neoplasia and Vulvar Aberrant Maturation. J Low Genit Tract Dis 2021; 25: 57-70
  • 5 Barlow EL, Lambie N, Donoghoe MW. et al. The Clinical Relevance of p16 and p53 Status in Patients with Squamous Cell Carcinoma of the Vulva. J Oncol 2020; 2020: 3739075
  • 6 Sand FL, Nielsen DMB, Frederiksen MH. et al. The prognostic value of p16 and p53 expression for survival after vulvar cancer: A systematic review and meta-analysis. Gynecol Oncol 2019; 152: 208-217
  • 7 Tessier-Cloutier B, Pors J, Thompson E. et al. Molecular characterization of invasive and in situ squamous neoplasia of the vulva and implications for morphologic diagnosis and outcome. Mod Pathol 2021; 34: 508-518
  • 8 Cheng AS, Karnezis AN, Jordan S. et al. p16 Immunostaining Allows for Accurate Subclassification of Vulvar Squamous Cell Carcinoma Into HPV-Associated and HPV-Independent Cases. Int J Gynecol Pathol 2016; 35: 385-393
  • 9 Santos M, Landolfi S, Olivella A. et al. p16 overexpression identifies HPV-positive vulvar squamous cell carcinomas. Am J Surg Pathol 2006; 30: 1347-1356
  • 10 Nooij LS, Ter Haar NT, Ruano D. et al. Genomic Characterization of Vulvar (Pre)cancers Identifies Distinct Molecular Subtypes with Prognostic Significance. Clin Cancer Res 2017; 23: 6781-6789
  • 11 Woelber L, Prieske K, Eulenburg C. et al. p53 and p16 expression profiles in vulvar cancer: a translational analysis by the Arbeitsgemeinschaft Gynäkologische Onkologie Chemo and Radiotherapy in Epithelial Vulvar Cancer study group. Am J Obstet Gynecol 2021; 224: 595.e1-595.e11
  • 12 Darragh TM, Colgan TJ, Thomas Cox J. et al. The Lower Anogenital Squamous Terminology Standardization project for HPV-associated lesions: background and consensus recommendations from the College of American Pathologists and the American Society for Colposcopy and Cervical Pathology. Int J Gynecol Pathol 2013; 32: 76-115
  • 13 Dasgupta S, Ewing-Graham PC, Swagemakers SMA. et al. Precursor lesions of vulvar squamous cell carcinoma – histology and biomarkers: A systematic review. Crit Rev Oncol Hematol 2020; 147: 102866
  • 14 Tessier-Cloutier B, Kortekaas KE, Thompson E. et al. Major p53 immunohistochemical patterns in in situ and invasive squamous cell carcinomas of the vulva and correlation with TP53 mutation status. Mod Pathol 2020; 33: 1595-1605
  • 15 Yap ML, Allo G, Cuartero J. et al. Prognostic Significance of Human Papilloma Virus and p16 Expression in Patients with Vulvar Squamous Cell Carcinoma who Received Radiotherapy. Clin Oncol (R Coll Radiol) 2018; 30: 254-261
  • 16 Lee LJ, Howitt B, Catalano P. et al. Prognostic importance of human papillomavirus (HPV) and p16 positivity in squamous cell carcinoma of the vulva treated with radiotherapy. Gynecol Oncol 2016; 142: 293-298
  • 17 Proctor L, Hoang L, Moore J. et al. Association of human papilloma virus status and response to radiotherapy in vulvar squamous cell carcinoma. Int J Gynecol Cancer 2020; 30: 100-106
  • 18 Allo G, Yap ML, Cuartero J. et al. HPV-independent Vulvar Squamous Cell Carcinoma is Associated With Significantly Worse Prognosis Compared With HPV-associated Tumors. Int J Gynecol Pathol 2020; 39: 391-399
  • 19 Rasmussen CL, Sand FL, Hoffmann Frederiksen M. et al. Does HPV status influence survival after vulvar cancer?. Int J Cancer 2018; 142: 1158-1165
  • 20 McAlpine JN, Leung SCY, Cheng A. et al. Human papillomavirus (HPV)-independent vulvar squamous cell carcinoma has a worse prognosis than HPV-associated disease: a retrospective cohort study. Histopathology 2017; 71: 238-246
  • 21 Angelico G, Santoro A, Inzani F. et al. Hormonal Environment and HER2 Status in Extra-Mammary Pagetʼs Disease (eMPD): A Systematic Literature Review and Meta-Analysis with Clinical Considerations. Diagnostics (Basel) 2020; 10: 1040
  • 22 Hellman K, Lindquist D, Ranhem C. et al. Human papillomavirus, p16(INK4A), and Ki-67 in relation to clinicopathological variables and survival in primary carcinoma of the vagina. Br J Cancer 2014; 110: 1561-1570
  • 23 Höckel M, Horn L-C, Illig R. et al. Ontogenetic anatomy of the distal vagina: relevance for local tumor spread and implications for cancer surgery. Gynecol Oncol 2011; 122: 313-318
  • 24 Horn L-C, Höhn AK, Hampl M. et al. S2k-Leitlinie Diagnostik und Therapie des Vaginalkarzinoms und seiner Vorstufen – Anforderungen an die Pathologie. Der Pathologe 2021; 42: 116-124
  • 25 de Sanjosé S, Serrano B, Tous S. et al. RIS HPV TT, VVAP and Head and Neck study groups. Burden of Human Papillomavirus (HPV)-Related Cancers Attributable to HPVs 6/11/16/18/31/33/45/52 and 58. JNCI Cancer Spectr 2019; 2: pky045
  • 26 Li N, Franceschi S, Howell-Jones R. et al. Human papillomavirus type distribution in 30,848 invasive cervical cancers worldwide: Variation by geographical region, histological type and year of publication. Int J Cancer 2011; 128: 927-935
  • 27 Casey S, Harley I, Jamison J. et al. A rare case of HPV-negative cervical squamous cell carcinoma. Int J Gynecol Pathol 2015; 34: 208-212
  • 28 Hodgson A, Olkhov-Mitsel E, Howitt BE. et al. International Endocervical Adenocarcinoma Criteria and Classification (IECC): correlation with adverse clinicopathological features and patient outcome. J Clin Pathol 2019; 72: 347-353
  • 29 Stolnicu S, Hoang L, Chiu D. et al. Clinical Outcomes of HPV-associated and Unassociated Endocervical Adenocarcinomas Categorized by the International Endocervical Adenocarcinoma Criteria and Classification (IECC). Am J Surg Pathol 2019; 43: 466-474
  • 30 Nicolás I, Saco A, Barnadas E. et al. Prognostic implications of genotyping and p16 immunostaining in HPV-positive tumors of the uterine cervix. Mod Pathol 2020; 33: 128-137
  • 31 Stolnicu S, Barsan I, Hoang L. et al. International Endocervical Adenocarcinoma Criteria and Classification (IECC): A New Pathogenetic Classification for Invasive Adenocarcinomas of the Endocervix. Am J Surg Pathol 2018; 42: 214-226
  • 32 AWMF. S3-Leitlinie zur Diagnostik, Therapie und Nachsorge der Patientin mit Zervixkarzinom, 2021. Accessed January 26, 2021 at: https://www.awmf.org/leitlinien/detail/ll/032-033OL.html
  • 33 Nuovo GJ, Plaia TW, Belinsky SA. et al. In situ detection of the hypermethylation-induced inactivation of the p16 gene as an early event in oncogenesis. Proc Natl Acad Sci U S A 1999; 96: 12754-12759
  • 34 Shain AF, Kwok S, Folkins AK. et al. Utility of p16 Immunohistochemistry in Evaluating Negative Cervical Biopsies Following High-risk Pap Test Results. Am J Surg Pathol 2018; 42: 69-75
  • 35 Shain AF, Wilbur DC, Stoler MH. et al. Test Characteristics of Specific p16 Clones in the Detection of High-grade Squamous Intraepithelial Lesions (HSIL). Int J Gynecol Pathol 2018; 37: 82-87
  • 36 Nuovo AJ, Garofalo M, Mikhail A. et al. The effect of aging of formalin-fixed paraffin-embedded tissues on the in situ hybridization and immunohistochemistry signals in cervical lesions. Diagn Mol Pathol 2013; 22: 164-173
  • 37 Carleton C, Hoang L, Sah S. et al. A Detailed Immunohistochemical Analysis of a Large Series of Cervical and Vaginal Gastric-type Adenocarcinomas. Am J Surg Pathol 2016; 40: 636-644
  • 38 Parra-Herran C, Taljaard M, Djordjevic B. et al. Pattern-based classification of invasive endocervical adenocarcinoma, depth of invasion measurement and distinction from adenocarcinoma in situ: interobserver variation among gynecologic pathologists. Mod Pathol 2016; 29: 879-892
  • 39 Ip PP. Benign endometrial proliferations mimicking malignancies: a review of problematic entities in small biopsy specimens. Virchows Arch 2018; 472: 907-917
  • 40 Howitt BE, Quade BJ, Nucci MR. Uterine polyps with features overlapping with those of Müllerian adenosarcoma: a clinicopathologic analysis of 29 cases emphasizing their likely benign nature. Am J Surg Pathol 2015; 39: 116-126
  • 41 McCluggage WG. A practical approach to the diagnosis of mixed epithelial and mesenchymal tumours of the uterus. Mod Pathol 2016; 29 (Suppl. 01) S78-S91
  • 42 Knopp S, Bjørge T, Nesland JM. et al. p16INK4a and p21Waf1/Cip1 expression correlates with clinical outcome in vulvar carcinomas. Gynecol Oncol 2004; 95: 37-45
  • 43 Roma AA, Mistretta T-A, Diaz De Vivar A. et al. New pattern-based personalized risk stratification system for endocervical adenocarcinoma with important clinical implications and surgical outcome. Gynecol Oncol 2016; 141: 36-42
  • 44 Höckel M, Trott S, Dornhöfer N. et al. Vulvar field resection based on ontogenetic cancer field theory for surgical treatment of vulvar carcinoma: a single-centre, single-group, prospective trial. Lancet Oncol 2018; 19: 537-548

Correspondence/Korrespondenzadresse

Dr. med. Anne Kathrin Höhn
Arbeitsgruppe Mamma-, Gynäko- & Perinatalpathologie
Institut für Pathologie
Universitätsklinikum Leipzig AöR
Liebigstraße 26
04103 Leipzig
Deutschland   

Publikationsverlauf

Eingereicht: 16. April 2021

Angenommen nach Revision: 05. Juli 2021

Artikel online veröffentlicht:
06. Oktober 2021

© 2021. The Author(s). This is an open access article published by Thieme under the terms of the Creative Commons Attribution-NonDerivative-NonCommercial License, permitting copying and reproduction so long as the original work is given appropriate credit. Contents may not be used for commecial purposes, or adapted, remixed, transformed or built upon. (https://creativecommons.org/licenses/by-nc-nd/4.0/)

Georg Thieme Verlag KG
Rüdigerstraße 14, 70469 Stuttgart, Germany

  • References/Literatur

  • 1 Lokuhetty D, White VA, Watanabe R. Female genital Tumours. 5th ed. Lyon: Internal Agency for Research on Cancer (IARC); 2020
  • 2 Singh N, Gilks CB. Vulval squamous cell carcinoma and its precursors. Histopathology 2020; 76: 128-138
  • 3 Watkins JC. Human Papillomavirus-Independent Squamous Lesions of the Vulva. Surg Pathol Clin 2019; 12: 249-261
  • 4 Heller DS, Day T, Allbritton JI. et al. Diagnostic Criteria for Differentiated Vulvar Intraepithelial Neoplasia and Vulvar Aberrant Maturation. J Low Genit Tract Dis 2021; 25: 57-70
  • 5 Barlow EL, Lambie N, Donoghoe MW. et al. The Clinical Relevance of p16 and p53 Status in Patients with Squamous Cell Carcinoma of the Vulva. J Oncol 2020; 2020: 3739075
  • 6 Sand FL, Nielsen DMB, Frederiksen MH. et al. The prognostic value of p16 and p53 expression for survival after vulvar cancer: A systematic review and meta-analysis. Gynecol Oncol 2019; 152: 208-217
  • 7 Tessier-Cloutier B, Pors J, Thompson E. et al. Molecular characterization of invasive and in situ squamous neoplasia of the vulva and implications for morphologic diagnosis and outcome. Mod Pathol 2021; 34: 508-518
  • 8 Cheng AS, Karnezis AN, Jordan S. et al. p16 Immunostaining Allows for Accurate Subclassification of Vulvar Squamous Cell Carcinoma Into HPV-Associated and HPV-Independent Cases. Int J Gynecol Pathol 2016; 35: 385-393
  • 9 Santos M, Landolfi S, Olivella A. et al. p16 overexpression identifies HPV-positive vulvar squamous cell carcinomas. Am J Surg Pathol 2006; 30: 1347-1356
  • 10 Nooij LS, Ter Haar NT, Ruano D. et al. Genomic Characterization of Vulvar (Pre)cancers Identifies Distinct Molecular Subtypes with Prognostic Significance. Clin Cancer Res 2017; 23: 6781-6789
  • 11 Woelber L, Prieske K, Eulenburg C. et al. p53 and p16 expression profiles in vulvar cancer: a translational analysis by the Arbeitsgemeinschaft Gynäkologische Onkologie Chemo and Radiotherapy in Epithelial Vulvar Cancer study group. Am J Obstet Gynecol 2021; 224: 595.e1-595.e11
  • 12 Darragh TM, Colgan TJ, Thomas Cox J. et al. The Lower Anogenital Squamous Terminology Standardization project for HPV-associated lesions: background and consensus recommendations from the College of American Pathologists and the American Society for Colposcopy and Cervical Pathology. Int J Gynecol Pathol 2013; 32: 76-115
  • 13 Dasgupta S, Ewing-Graham PC, Swagemakers SMA. et al. Precursor lesions of vulvar squamous cell carcinoma – histology and biomarkers: A systematic review. Crit Rev Oncol Hematol 2020; 147: 102866
  • 14 Tessier-Cloutier B, Kortekaas KE, Thompson E. et al. Major p53 immunohistochemical patterns in in situ and invasive squamous cell carcinomas of the vulva and correlation with TP53 mutation status. Mod Pathol 2020; 33: 1595-1605
  • 15 Yap ML, Allo G, Cuartero J. et al. Prognostic Significance of Human Papilloma Virus and p16 Expression in Patients with Vulvar Squamous Cell Carcinoma who Received Radiotherapy. Clin Oncol (R Coll Radiol) 2018; 30: 254-261
  • 16 Lee LJ, Howitt B, Catalano P. et al. Prognostic importance of human papillomavirus (HPV) and p16 positivity in squamous cell carcinoma of the vulva treated with radiotherapy. Gynecol Oncol 2016; 142: 293-298
  • 17 Proctor L, Hoang L, Moore J. et al. Association of human papilloma virus status and response to radiotherapy in vulvar squamous cell carcinoma. Int J Gynecol Cancer 2020; 30: 100-106
  • 18 Allo G, Yap ML, Cuartero J. et al. HPV-independent Vulvar Squamous Cell Carcinoma is Associated With Significantly Worse Prognosis Compared With HPV-associated Tumors. Int J Gynecol Pathol 2020; 39: 391-399
  • 19 Rasmussen CL, Sand FL, Hoffmann Frederiksen M. et al. Does HPV status influence survival after vulvar cancer?. Int J Cancer 2018; 142: 1158-1165
  • 20 McAlpine JN, Leung SCY, Cheng A. et al. Human papillomavirus (HPV)-independent vulvar squamous cell carcinoma has a worse prognosis than HPV-associated disease: a retrospective cohort study. Histopathology 2017; 71: 238-246
  • 21 Angelico G, Santoro A, Inzani F. et al. Hormonal Environment and HER2 Status in Extra-Mammary Pagetʼs Disease (eMPD): A Systematic Literature Review and Meta-Analysis with Clinical Considerations. Diagnostics (Basel) 2020; 10: 1040
  • 22 Hellman K, Lindquist D, Ranhem C. et al. Human papillomavirus, p16(INK4A), and Ki-67 in relation to clinicopathological variables and survival in primary carcinoma of the vagina. Br J Cancer 2014; 110: 1561-1570
  • 23 Höckel M, Horn L-C, Illig R. et al. Ontogenetic anatomy of the distal vagina: relevance for local tumor spread and implications for cancer surgery. Gynecol Oncol 2011; 122: 313-318
  • 24 Horn L-C, Höhn AK, Hampl M. et al. S2k-Leitlinie Diagnostik und Therapie des Vaginalkarzinoms und seiner Vorstufen – Anforderungen an die Pathologie. Der Pathologe 2021; 42: 116-124
  • 25 de Sanjosé S, Serrano B, Tous S. et al. RIS HPV TT, VVAP and Head and Neck study groups. Burden of Human Papillomavirus (HPV)-Related Cancers Attributable to HPVs 6/11/16/18/31/33/45/52 and 58. JNCI Cancer Spectr 2019; 2: pky045
  • 26 Li N, Franceschi S, Howell-Jones R. et al. Human papillomavirus type distribution in 30,848 invasive cervical cancers worldwide: Variation by geographical region, histological type and year of publication. Int J Cancer 2011; 128: 927-935
  • 27 Casey S, Harley I, Jamison J. et al. A rare case of HPV-negative cervical squamous cell carcinoma. Int J Gynecol Pathol 2015; 34: 208-212
  • 28 Hodgson A, Olkhov-Mitsel E, Howitt BE. et al. International Endocervical Adenocarcinoma Criteria and Classification (IECC): correlation with adverse clinicopathological features and patient outcome. J Clin Pathol 2019; 72: 347-353
  • 29 Stolnicu S, Hoang L, Chiu D. et al. Clinical Outcomes of HPV-associated and Unassociated Endocervical Adenocarcinomas Categorized by the International Endocervical Adenocarcinoma Criteria and Classification (IECC). Am J Surg Pathol 2019; 43: 466-474
  • 30 Nicolás I, Saco A, Barnadas E. et al. Prognostic implications of genotyping and p16 immunostaining in HPV-positive tumors of the uterine cervix. Mod Pathol 2020; 33: 128-137
  • 31 Stolnicu S, Barsan I, Hoang L. et al. International Endocervical Adenocarcinoma Criteria and Classification (IECC): A New Pathogenetic Classification for Invasive Adenocarcinomas of the Endocervix. Am J Surg Pathol 2018; 42: 214-226
  • 32 AWMF. S3-Leitlinie zur Diagnostik, Therapie und Nachsorge der Patientin mit Zervixkarzinom, 2021. Accessed January 26, 2021 at: https://www.awmf.org/leitlinien/detail/ll/032-033OL.html
  • 33 Nuovo GJ, Plaia TW, Belinsky SA. et al. In situ detection of the hypermethylation-induced inactivation of the p16 gene as an early event in oncogenesis. Proc Natl Acad Sci U S A 1999; 96: 12754-12759
  • 34 Shain AF, Kwok S, Folkins AK. et al. Utility of p16 Immunohistochemistry in Evaluating Negative Cervical Biopsies Following High-risk Pap Test Results. Am J Surg Pathol 2018; 42: 69-75
  • 35 Shain AF, Wilbur DC, Stoler MH. et al. Test Characteristics of Specific p16 Clones in the Detection of High-grade Squamous Intraepithelial Lesions (HSIL). Int J Gynecol Pathol 2018; 37: 82-87
  • 36 Nuovo AJ, Garofalo M, Mikhail A. et al. The effect of aging of formalin-fixed paraffin-embedded tissues on the in situ hybridization and immunohistochemistry signals in cervical lesions. Diagn Mol Pathol 2013; 22: 164-173
  • 37 Carleton C, Hoang L, Sah S. et al. A Detailed Immunohistochemical Analysis of a Large Series of Cervical and Vaginal Gastric-type Adenocarcinomas. Am J Surg Pathol 2016; 40: 636-644
  • 38 Parra-Herran C, Taljaard M, Djordjevic B. et al. Pattern-based classification of invasive endocervical adenocarcinoma, depth of invasion measurement and distinction from adenocarcinoma in situ: interobserver variation among gynecologic pathologists. Mod Pathol 2016; 29: 879-892
  • 39 Ip PP. Benign endometrial proliferations mimicking malignancies: a review of problematic entities in small biopsy specimens. Virchows Arch 2018; 472: 907-917
  • 40 Howitt BE, Quade BJ, Nucci MR. Uterine polyps with features overlapping with those of Müllerian adenosarcoma: a clinicopathologic analysis of 29 cases emphasizing their likely benign nature. Am J Surg Pathol 2015; 39: 116-126
  • 41 McCluggage WG. A practical approach to the diagnosis of mixed epithelial and mesenchymal tumours of the uterus. Mod Pathol 2016; 29 (Suppl. 01) S78-S91
  • 42 Knopp S, Bjørge T, Nesland JM. et al. p16INK4a and p21Waf1/Cip1 expression correlates with clinical outcome in vulvar carcinomas. Gynecol Oncol 2004; 95: 37-45
  • 43 Roma AA, Mistretta T-A, Diaz De Vivar A. et al. New pattern-based personalized risk stratification system for endocervical adenocarcinoma with important clinical implications and surgical outcome. Gynecol Oncol 2016; 141: 36-42
  • 44 Höckel M, Trott S, Dornhöfer N. et al. Vulvar field resection based on ontogenetic cancer field theory for surgical treatment of vulvar carcinoma: a single-centre, single-group, prospective trial. Lancet Oncol 2018; 19: 537-548

Zoom Image
Fig. 1 Clinicopathological characteristics of the 2020 WHO classification of vulvar precancerous lesions [1], [2], [3], [4], [12], [14].
Zoom Image
Fig. 2 Precancerous lesions (VIN) and vulvar carcinoma. a HPV-associated VIN (usual VIN; u-VIN), b and c non-keratinizing, HPV-associated squamous cell carcinoma of the vulva with a plump pattern of invasion and p16 positivity (so-called block staining; see text), d HPV-independent VIN (d-VIN), e and f keratinizing squamous cell carcinoma of the vulva with a netlike pattern of invasion and aberrant p53 expression (see text).
Zoom Image
Fig. 5 Clinicopathological characteristics of the 2020 WHO classification of squamous cell carcinoma of the female genitals [1], [5], [6], [8], [9], [11], [12], [13], [14], [17], [18], [20], [24], [27], [44].
Zoom Image
Fig. 3 Verrucous carcinoma of the vulva: exophytic verrucous growth of well-differentiated squamous cell epithelium with superficial parakeratosis and a sharp demarcation, with only focal infiltration (arrow), from the subjacent stroma.
Zoom Image
Fig. 4 Precancerous lesions and carcinoma of the vagina. a HPV-associated precancerous lesion of the vagina (VAIN 3), b keratinizing squamous cell carcinoma of the vagina with slight peritumoral desmoplasia and absence of peritumoral inflammation, c non-keratinizing squamous cell carcinoma of the vagina with a high degree of peritumoral inflammation.
Zoom Image
Fig. 6 Classification of adenocarcinoma of the cervix uteri in accordance with the 2020 WHO classification [1], [28], [29], [31], [32], [37]. Small image: strong p16 positivity of a usual-type AC.
Zoom Image
Fig. 7 Adenosarcoma of the Uterus: foliaceous tumor growth with very cell-poor stroma (*) showing discrete accentuation of the cell density underneath the superficial epithelium (arrows) with a bland cytology.
Zoom Image
Abb. 1 Klinikopathologische Charakteristika der WHO-Klassifikation 2020 der vulvären Präkanzerosen [1], [2], [3], [4], [12], [14].
Zoom Image
Abb. 2 Präkanzerosen (VIN) und Karzinom der Vulva. a HPV-assoziierte VIN (usual VIN; u-VIN), b und c nicht keratinisierendes, HPV-assoziiertes Plattenepithelkarzinom der Vulva mit plumpem Invasionsmuster und p16-Positivität (sog. block-staining; s. Text), d HPV-unabhängige VIN (d-VIN), e und f keratinisierendes Plattenepithelkarzinom der Vulva mit netzigem Invasionsmuster und aberranter p53-Expression (s. Text).
Zoom Image
Abb. 5 Klinikopathologische Charakteristika der WHO-Klassifikation 2020 von Plattenepithelkarzinomen des unteren weiblichen Genitales [1], [5], [6], [8], [9], [11], [12], [13], [14], [17], [18], [20], [24], [27], [44].
Zoom Image
Abb. 3 Verruköses Karzinom der Vulva: exophytisch-verruköses Wachstum gut differenzierter Plattenepithelien mit oberflächlicher Parakeratose und scharfer, nur fokal infiltrativer Begrenzung (Pfeil) zum darunterliegenden Stroma.
Zoom Image
Abb. 4 Präkanzerosen und Karzinom der Vagina. a HPV-assoziiertes Präkanzerose der Vagina (VAIN 3), b keratinisierendes Plattenepithelkarzinom der Vagina mit geringer peritumoraler Desmoplasie und fehlender peritumoraler Entzündung, c nicht keratinisierendes Plattenepithelkarzinom der Vagina mit hochgradiger peritumoraler Entzündung.
Zoom Image
Abb. 6 Einteilung von Adenokarzinomen der Cervix uteri entsprechend der WHO-Klassifikation 2020 [1], [28], [29], [31], [32], [37]. Kleines Bild: starke p16-Positivität eines AC usual type.
Zoom Image
Abb. 7 Adenosarkom des Uterus: blattartiges Wachstum des Tumors mit sehr zellarmem Stroma (*), das eine diskrete Akzentuierung der Zelldichte unter dem oberflächlichen Epithel zeigt (Pfeile) mit blander Zytologie.