Zusammenfassung
In dieser prolektiven Studie soll die Kombination eines Kollagen-Gentamicin-Präparates
in Verbindung mit Vancomycin in Pulverform bei der lokalen Behandlung der therapierefraktären
Osteomyelitis hinsichtlich der Freisetzungskinetik, Arzneimittelsicherheit, Beeinflussung
des Erregerspektrums und der mittelfristigen Wirksamkeit untersucht werden. Die modifizierte
Wirkstoffträgerkombination wurde bei 19 Patienten mit persistierender Osteomyelitis
appliziert und durch serielle Mikrobiologie- und Wirkstoffspiegelbestimmungen aus
Serum und Drainageflüssigkeit dokumentiert. Das Nachbeobachtungsintervall betrug durchschnittlich
14,6 Monate. Die Wirkstoffkombination des gentamicinhaltigen Kollagenschwammes mit
Vancomycin-Pulver erreichte in der klinischen Anwendung initial eine Infektberuhigungsrate
von 89 % (langfristig 67 %) und ist den in der Literatur beschriebenen Ergebnissen
für ähnliche Patientenkollektive ebenbürtig. Die Selektion resistenter Erregerstämme
wurde nicht beobachtet. Es gelang eine protrahiert hohe Wirkstofffreisetzung ohne
systemische oder lokale Arzneimittelnebenwirkungen. Die lokal erreichten supramaximalen
Konzentrationen erwiesen sich auch gegen primär resistente Erreger (63 %) als wirksam.
In der Behandlung der therapierefraktären Osteomyelitis durch zunehmend resistente,
gram-positive Erreger stellt die untersuchte Wirkstoffkombination eine valide Bereicherung
der wenigen verbliebenen Therapieoptionen dar.
Abstract
This open-label, non-comparative study evaluated the combination of a gentamicin-containing
collagenous sponge with vancomycin-powder in the local treatment of refractory osteomyelitis.
Long-term outcome, release-kinetics, drug-safety and emergence of resistant pathogen-strains
were assessed. The modified combination was administered in 19 patients with persistent
osteomyelitis. Serial bacteriologic cultures and drug levels in exsudate and serum
were analyzed. Patient follow-up averaged 14.6 months. The combination of a gentamicin-sponge
with vancomycin powder resulted in an initial infection arrest in 89 % of patients
(long-term 67 %). This equals literature outcomes for comparable patient groups. Selection
of resistant pathogen-strains was not encountered. Both antibiotics were locally released
at high and protracted levels without systemic or local adverse reactions. Local peak-concentrations
successfully eradicated even primarily resistant pathogen strains (63 %). This biodegradable
antibiotic combination represents a valid alternative to the few local therapy options
that are available for the treatment of refractory osteomyelitis increasingly caused
by multiresistant, gram-positive pathogens.
Literatur
- 1
Ascherl R, Stemberg A, Lechner F, Blümel G.
Lokale Infektbehandlung mit Kollagen-Gentamicin.
Akt Probl Chir Orthop.
1990;
34
85-93
- 2
Balwit J M, van Langevelde P, Vann J M, Proctor R A.
Gentamicin-resistant menadione and hemin auxotrophic Staphylococcus aureus persist
within cultured endothelial cells.
J Infect Dis.
1994;
170
1033-1037
- 3
Calhoun J H, Mader J T.
Treatment of osteomyelitis with a biodegradable antibiotic implant.
Clin Orthop.
1997;
341
206-214
- 4
Ciampolini J, Harding K G.
Pathophysiology of chronic bacterial osteomyelitis. Why do antibiotics fail so often?.
Postgrad Med J.
2000;
76
479-483
- 5
Drew R H, Perfect J R, Srinath L, Kurkimilis E, Dowzicky M, Talbot G H.
Treatment of methicillin-resistant staphylococcus aureus infections with quinupristin-dalfopristin
in patients intolerant of or failing prior therapy. For the Synercid Emergency-Use
Study Group.
J Antimicrob Chemother.
2000;
46
775-784
- 6
Ena J, Dick R W, Jones R N, Wenzel R P.
The epidemiology of intravenous vancomycin usage in a university hospital. A 10-year
study.
JAMA.
1993;
269
598-602
- 7
Frieden T R, Munsiff S S, Lowe D E. et al .
Emergence of vancomycin-resistant enterococci in New York City.
Lancet.
1993;
342
76-79
- 8
Galanakis N, Giamarellou H, Moussas T, Dounis E.
Chronic osteomyelitis caused by multiresistant Gram-negative bacteria: evaluation
of treatment with newer quinolones after prolonged follow-up.
J Antimicrob Chemother.
1997;
39
241-246
- 9
Gold H S, Moellering R C Jr.
Antimicrobial-drug resistance.
N Engl J Med.
1996;
335
1445-1453
- 10
Hettfleisch J, Schöttle H.
Lokale Antibiotikaprophylaxe bei der Marknagelung mittels gentamicin-imprägnierter
Biomaterialien.
Akt Traumatol.
1993;
23
68-71
- 11
Jentschura G.
Zur Frage des Heilungsbegriffes der chronischen Osteomyelitis.
Z Orthop Ihre Grenzgeb.
1966;
101
587-596
- 12
Jerosch J, Lindner N, Fuchs S.
Langfristige Therapieergebnisse der chronischen, posttraumatischen Osteomyelitis mit
Gentamycin-PMMA-Ketten.
Unfallchirurg.
1995;
98
338-343
- 13
Kwasny O, Bockhorn G, Vecsei V.
The use of gentamicin collagen floss in the treatment of infections in trauma surgery.
Orthopedics.
1994;
17
421-425
- 14
Leder K, Turnidge J D, Korman T M, Grayson M L.
The clinical efficacy of continuous-infusion flucloxacillin in serious staphylococcal
sepsis.
J Antimicrob Chemother.
1999;
43
113-118
- 15
Letsch R, Rosenthal E, Joka T.
Lokale Antibiotika-Applikation in der Osteomyelitisbehandlung - eine Vergleichsstudie
mit zwei verschiedenen Trägersubstanzen.
Akt Traumatol.
1993;
23
324-329
- 16
Lucht R F, Fresard A, Berthelot P. et al .
Prolonged treatment of chronic Pseudomonas aeruginosa osteomyelitis with a combination
of two effective antibiotics.
Infection.
1994;
22
276-280
- 17
Moellering R C, Linden P K, Reinhardt J, Blumberg E A, Bompart F, Talbot G H.
The efficacy and safety of quinupristin/dalfopristin for the treatment of infections
caused by vancomycin-resistant Enterococcus faecium. Synercid Emergency-Use Study
Group.
J Antimicrob Chemother.
1999;
44
251-261
- 18
Moellering R C Jr.
Vancomycin-resistant enterococci.
Clin Infect Dis.
1998;
26
1196-1199
- 19
Moore R D, Lietman P S, Smith C R.
Clinical response to aminoglycoside therapy: importance of the ratio of peak concentration
to minimal inhibitory concentration.
J Infect Dis.
1987;
155
93-99
- 20
Nichols R L, Graham D R, Barriere S L. et al .
Treatment of hospitalized patiens with complicated gram-positive skin and skin structure
infections: two randomized, multicentre studies of quinupristin/dalfopristin versus
cefazolin, oxacillin or vancomycin. Synercid Skin and Skin Structure Infection Group.
J Antimicrob Chemother.
1999;
44
263-273
- 21
Patzakis M J, Mazur K, Wilkins J, Sherman R, Holtom P.
Septopal beads and autogenous bone grafting for bone defects in patients with chronic
osteomyelitis.
Clin Orthop.
1993;
295
112-118
- 22
Schentag J J, Hyatt J M, Carr J R. et al .
Genesis of methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA), how treatment of MRSA
infections has selected for vancomycin-resistant Enterococcus faecium, and the importance
of antibiotic management and infection control.
Clin Infect Dis.
1998;
26
1204-1214
- 23
Smith T L, Pearson M L, Wilcox K R. et al .
Emergence of vancomycin resistance in Staphylococcus aureus. Glycopeptide-Intermediate
Staphylococcus aureus Working Group.
N Engl J Med.
1999;
340
493-501
- 24
Sorensen T S, Sorensen A I, Merser S.
Rapid release of gentamicin from collagen sponge. In vitro comparison with plastic
beads.
Acta Orthop Scand.
1990;
61
353-356
- 25
von Eiff C, Bettin D, Proctor R A. et al .
Recovery of small colony variants of Staphylococcus aureus following gentamicin bead
placement for osteomyelitis.
Clin Infect Dis.
1997;
25
1250-1251
- 26
von Hasselbach C.
Klinik und Pharmakokinetik von Kollagen-Gentamicin als adjuvante Lokaltherapie knöcherner
Infektionen.
Unfallchirurg.
1989;
92
459-470
- 27
Walenkamp G H.
Chronic osteomyelitis.
Acta Orthop Scand.
1997;
68
497-506
- 28
Walenkamp G H, Kleijn L L, de Leeuw M.
Osteomyelitis treated with gentamicin-PMMA beads: 100 patients followed for 1-12 years.
Acta Orthop Scand.
1998;
69
518-522
- 29
Wernet E, Ekkernkamp A, Jellestad H, Muhr G.
Antibiotikahaltiges Kollagenvlies in der Osteitistherapie.
Unfallchirurg.
1992;
95
259-264
- 30
Zaske D E, Cipolle R J, Rotschafer J C, Solem L D, Mosier N R, Strate R G.
Gentamicin pharmacokinetics in 1,640 patients: method for control of serum concentrations.
Antimicrob Agents Chemother.
1982;
21
407-411
Prof. Dr. M. A. Scherer
Chirurgische Klinik und Poliklinik · Klinikum rechts der Isar der Technischen Universität
München · Abteilung für Unfallchirurgie
Ismaninger Straße 22 · 81675 München
Phone: 089/4140-2026
Fax: 089/4140-4890
Email: scherer@nt1.chir.med.tu-muenchen.de