Abstract
Granulocyte colony-stimulating factor (G-CSF) was previously shown to be produced
constitutively by malignant epithelial cells and by monocytes/macrophages, fibroblasts
and endothelial cells following stimulation. In this study we investigated the ability
of medulloblastoma cells, representing malignant embryonal neuroectodermal cells,
to produce G-CSF. Conditioned medium was freshly prepared from unstimulated explanted
tumor tissue from two patients with medulloblastoma as well as from the medulloblastoma
cell lines TE-671 and DAOY, and as controls normal glial cells. Following 72 hours
of culture at a density of 5×105 cells/ml in RPMI 1640 with 10% FCS, the supernatants were harvested and tested for
the presence of G-CSF in (1) the CFU-GM asay, (2) proliferation assay using the G-CSF
dependent cell line NFS-60, and (3) Western blot analysis using an anti-G-CSF monoclonal
antibody. Biological active and immunological detectable G-CSF was secreted by the
medulloblastoma cell line DAOY and by one of the explanted tumor biopsies. The cell
line TE-671 as well as normal glial cells did not produce G-CSF under identical culture
conditions. We conclude that in addition to previously described sources of G-CSF,
neuroectodermally derived medulloblastoma cells are also able to produce G-CSF constitutively.
The G-CSF production was increased after stimulation with IL-1 alpha or TNF alpha.
The role of G-CSF in neuroectodermal tissues remains to be further investigated.
Zusammenfassung
Granulozyten-Kolonien stimulierender Faktor (G-CSF) wird konstitutiv von malignen
Epithelzellen und nach Stimulation von Monozyten/Makrophagen, Fibroblasten und Endothelzellen
produziert. In dieser Untersuchung wurden Medulloblastomzellen als maligne embryonale
neuroektodermale Zellen auf ihre Fähigkeit hin getestet, G-CSF zu produzieren. Konditionierte
Medien wurden sowohl von unstimulierten Tumorexplantaten von zwei Medulloblastompatienten
als auch von den Medulloblastomzellinien TE-671 und DAOY und als Kontrolle von kultivierten
Gliazellen hergestellt. Dazu wurden nach einer Kulturdauer von 72 Stunden bei einer
Zelldichte von 5×105 Zellen pro ml in RPMI 1640 mit 10% fötalem Kälberserum die Zellkulturüberstände geerntet
und auf den G-CSF Gehalt (1) im CFU-GM Assay, (2) in einem Proliferationstest der
G-CSF abhängigen Zellinie NFS-60 und (3) Western Blot Analyse mittels eines anti-G-CSF
monoklonalen Antikörpers getestet. Biologisch aktives und immunologisch nachweisbares
G-CSF wurde von der Medulloblastomzellinie DAOY und von einem Tumorexplantat sezerniert.
Die Zellinie TE-671 und auch normale Gliazellen produzierten bei identischen Kulturbedingungen
kein G-CSF. Aus diesen Beobachtungen folgern wir, daß neben den bisher bekannten G-CSF
produzierenden Zellsystemen auch dem Neuroektoderm entstammende Medulloblastomzellen
konstitutiv G-CSF produzieren. Durch Stimulation mit IL-1 alpha oder TNF alpha war
diese G-CSF Produktion noch zu steigern. Die spezifische Funktion von G-CSF in neuroektodermalen
Geweben wird Gegenstand weiterer Untersuchungen sein.