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DOI: 10.1055/s-2008-1027286
© Georg Thieme Verlag KG Stuttgart · New York
Die Retina-Organkultur - ein Modell für die Untersuchung früher zytoskelettaler Reaktionsmuster nach einer Netzhautablösung
The Retinal Organ Culture - a Model System for the Examination of the Early Cytoskeletal Reaction Pattern after Retinal DetachmentPublication History
Eingegangen: 17.12.2007
Angenommen: 27.2.2008
Publication Date:
09 April 2008 (online)

Zusammenfassung
Hintergrund: In-vivo-Tierexperimente haben belegt, dass dem Zytoskelett einer Zelle bei den strukturellen Veränderungen nach einer induzierten Netzhautablösung eine wichtige Funktion zukommt. In der vorliegenden Untersuchung soll geklärt werden, ob eine Retina-Organkultur als In-vitro-Modell für eine Netzhautablösung dienen kann und somit eine sinnvolle Ergänzung zu Tierversuchen darstellt. Das Hauptaugenmerk liegt hierbei auf den frühen zytoskelettalen Veränderungen nach der Netzhautablösung. Material und Methoden: Die Netzhäute von enukleierten Schweineaugen wurden auf speziellen Trägern für ein bis zwei Wochen kultiviert und anschließend immunhistochemisch (Vimentin, GFAP, alpha-Tubulin) sowie elektronenmikroskopisch untersucht. Ergebnisse: Die Ergebnisse belegen, dass die räumlichen und zeitlichen Reaktionen der untersuchten zytoskelettalen Veränderungen in vitro und in vivo vergleichbare Muster aufweisen. Neben den Intermediärfilamenten spielen vermutlich die Mikrotubuli, in der frühen Phase einer Gliose, d. h. bevor sich einzelne Müllerzellausläufer invasiv in den subretinalen Raum ausbreiten, eine wichtigere Rolle als bisher angenommen. Schlussfolgerungen: Mit dem vorgestellten Organkultur-Modell sollen zukünftig die bislang noch weitestgehend unverstandenen frühen Reaktionen einer retinalen Gliose, welche bereits mit subzellulären Veränderungen an der äußeren limitierenden Membran beginnen, untersucht werden. Das intrazelluläre Transportsystem der Mikrotubuli könnte bei den beschriebenen Prozessen eine wichtige Schlüsselfunktion einnehmen.
Abstract
Background: In vivo animal experiments have shown that the cytoskeleton plays a crucial role in case of structural changes after an induced retinal detachment. This study attempts to clarify whether a retinal organ culture could serve as an in vitro model for retinal detachment and thus represent an alternative to animal experiments. The main focus of this publication lies on the early cytoskeletal changes after retinal detachment. Materials and Methods: Porcine retinas were mounted on special carriers, cultured for one or two weeks and examined by standard immunohistological (vimentin, GFAP, alpha-tubulin), as well as electron microscopical procedures. Results: The cytoskeletal changes revealed similar spatio-temporal pattern compared with in vivo induced retinal detachments. In addition, it was shown that microtubules might play a crucial role in the early phase of gliosis, i. e., prior to a subretinal invasion by Müller cell extensions. Conclusions: The presented organ culture model will be used to unravel the largely unknown initial reactions of retinal gliosis, focusing on subcellular changes localised at the outer limiting membrane. The intracellular transport system of microtubules might play a key role in these processes.
Schlüsselwörter
Organkultur - Retina - Mikrotubuli - GFAP - Vimentin - Zytoskelett
Key words
organ culture - retina - microtubules - GFAP - vimentin - cytoskeleton
Literatur
- 1
Allamby D, Foreman D, Carrington L. et al .
Cell attachment to, and contraction of, the retina in vitro.
Invest Ophthalmol Vis Sci.
1997;
38
2064-2072
MissingFormLabel
- 2
Anderson D H, Stern W H, Fisher S K. et al .
Retinal detachment in the cat: The pigment epithelial - photorezeptor interface.
Invest Ophthalmol Vis Sci.
1983;
24
906-926
MissingFormLabel
- 3
Anderson D H, Guerin C J, Erickson P A. et al .
Morphological recovery in the reattached retina.
Invest Ophthalmol Vis Sci.
1986;
27
168-183
MissingFormLabel
- 4
Bonnet M, Hajjar C, Fleury J.
Subretinal proliferation and rhegmatogenous retinal detachment.
J Fr Ophtalmol.
1993;
16
235-240
MissingFormLabel
- 5
Carrington L, McLeod D, Boulton M.
IL-10 and antibodies to TGF-beta2 and PDGF inhibit RPE-mediated retinal contraction.
Invest Ophthalmol Vis Sci.
2000;
41
1210-1216
MissingFormLabel
- 6
Fisher S K, Erickson P A, Lewis G P. et al .
Intraretinal proliferation induced by retinal detachment.
Invest Ophthalmol Vis Sci.
1991;
32
1739-1748
MissingFormLabel
- 7
Foulds W.
Experimental retinal detachment.
Bibl Ophthalmol.
1966;
70
233-235
MissingFormLabel
- 8
Gähwiler B H.
Organotypic cultures of neural tissues.
TINS.
1988;
11
484-490
MissingFormLabel
- 9
Guillonneau X, Regnier-Ricard F, Laplace O. et al .
Fibroblast growth factor (FGF) soluble receptor 1 acts as a natural inhibitor of FGF2
neurotrophic activity during retinal degeneration.
Mol Biol Cell.
1998;
9
2785-2802
MissingFormLabel
- 10
Iandiev I, Uckermann O, Pannicke T. et al .
Glial cell reactivity in a porcine model of retinal detachment.
Invest Ophthalmol Vis Sci.
2006;
47
2161-2171
MissingFormLabel
- 11
Jackson T L, Hillenkamp J, Williamson T H. et al .
An experimental model of rhegmatogenous retinal detachment: surgical results and glial
cell response.
Invest Ophthalmol Vis Sci.
2003;
44
4026-4034
MissingFormLabel
- 12
Kenyon K R, Michels R G.
Ultrastructure of epiretinal membrane removed by pars plana vitreoretinal surgery.
Am J Ophthalmol.
1977;
83
815-823
MissingFormLabel
- 13
Laqua H.
Massive periretinal proliferation (MPP). IV. Pre- and subretinal proliferation of
glial tissue in experimental retinal detachment.
Mod Probl Ophthalmol.
1975;
15
235-245
MissingFormLabel
- 14
Laqua H, Machemer R.
Glial cell proliferation in retinal detachment (massive periretinal proliferation).
Am J Ophthalmol.
1975;
80
602-618
MissingFormLabel
- 15
Laqua H, Machemer R.
Clinico-pathological correlation in massive periretinal proliferation.
Am J Ophthalmol.
1975;
80
913-929
MissingFormLabel
- 16
Lewis G P, Erickson P A, Guerin C J. et al .
Changes in the expression of specific Muller cell proteins during long-term retinal
detachment.
Exp Eye Res.
1989;
49
93-111
MissingFormLabel
- 17
Lewis H, Aaberg T M.
Causes of failure after repeat vitreoretinal surgery for recurrent proliferative vitreoretinopathy.
Am J Ophthalmol.
1991;
111
15-19
MissingFormLabel
- 18
Lewis G P, Guerin C J, Anderson D H. et al .
Rapid changes in the expression of glial cell proteins caused by experimental retinal
detachment.
Am J Ophthalmol.
1994;
118
368-376
MissingFormLabel
- 19
Lewis G P, Matsumoto B, Fisher S K.
Changes in the organization and expression of cytoskeletal proteins during retinal
degeneration induced by retinal detachment.
Invest Ophthalmol Vis Sci.
1995;
36
2404-2416
MissingFormLabel
- 20
Lewis G P, Fisher S K.
Muller cell outgrowth after retinal detachment: association with cone photoreceptors.
Invest Ophthalmol Vis Sci.
2000;
41
1542-1545
MissingFormLabel
- 21
Machemer R, Laqua H.
Pigment epithelium proliferation in retinal detachment (massive periretinal proliferation).
Am J Ophthalmol.
1975;
80
1-23
MissingFormLabel
- 22
Mervin K, Valter K, Maslim J. et al .
Limiting photoreceptor death and deconstruction during experimental retinal detachment:
the value of oxygen supplementation.
Am J Ophthalmol.
1999;
128
155-164
MissingFormLabel
- 23
Miki H, Setou M, Kaneshiro K. et al .
All kinesin superfamily protein, KIF, genes in mouse and human.
Proc Natl Acad Sci USA.
2001;
98
7004-7011
MissingFormLabel
- 24
Nork T M, Ghobrial M W, Peyman G A. et al .
Massive retinal gliosis. A reactive proliferation of Muller cells.
Arch Ophthalmol.
1986;
104
1383-1389
MissingFormLabel
- 25
Nork T M, Wallow I H, Sramek S J. et al .
Muller’s cell involvement in proliferative diabetic retinopathy.
Arch Ophthalmol.
1987;
105
1424-1429
MissingFormLabel
- 26
Ogilvie J M, Speck J D, Lett J M.
Growth factors in combination, but not individually, rescue rd mouse photoreceptors
in organ culture.
Exp Neurol.
2000;
161
676-685
MissingFormLabel
- 27
Ryan S J.
Traction retinal detachment. XLIX Edward Jackson Memorial Lecture.
Am J Ophthalmol.
1993;
115
1-20
MissingFormLabel
- 28
Sidman R L.
Tissue culture studies of inherited retinal dystrophy.
Dis Nerv Syst.
1961;
22
14-20
MissingFormLabel
- 29
Smiddy W E, Fine S L, Quigley H A. et al .
Cell proliferation after laser photocoagulation in primate retina. An autoradiographic
study.
Arch Ophthalmol.
1986;
104
1065-1069
MissingFormLabel
- 30
Trese M, Chandler D B, Machemer R.
Macular pucker. II. Ultrastructure.
Graefes Arch Clin Exp Ophthalmol.
1983;
221
16-26
MissingFormLabel
- 31
Winkler J, Hagelstein S, Rohde M. et al .
Cellular and cytoskeletal dynamics within organ cultures of porcine neuroretina.
Exp Eye Res.
2002;
74
777-788
MissingFormLabel
Dr. Jörg Winkler
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