Transfusionsmedizin 2024; 14(03): 145-149
DOI: 10.1055/a-2138-6702
Kasuistik

Auflösung einer KEL1 Diskrepanz als Fallbeispiel der haplotypspezifischen Nanopore-Sequenzierung von Blutgruppengenen

Resolving a KEL1 Genotype-Phenotype Discrepancy as a Case Report for Haplotype-Specific Nanopore Sequencing of Blood Group Genes
Gian-Andri Thun
1   Blutspende Zürich SRK, Schlieren, Schweiz
,
Morgan Gueuning
1   Blutspende Zürich SRK, Schlieren, Schweiz
,
Yvonne Merki
1   Blutspende Zürich SRK, Schlieren, Schweiz
,
Nadine Niederberger
1   Blutspende Zürich SRK, Schlieren, Schweiz
,
Nadine Trost
1   Blutspende Zürich SRK, Schlieren, Schweiz
,
Sonja Sigurdardottir
1   Blutspende Zürich SRK, Schlieren, Schweiz
,
Charlotte Engström
1   Blutspende Zürich SRK, Schlieren, Schweiz
,
Maja P. Mattle-Greminger
1   Blutspende Zürich SRK, Schlieren, Schweiz
,
Stefan Meyer
1   Blutspende Zürich SRK, Schlieren, Schweiz
› Author Affiliations

Zusammenfassung

Aufgrund der starken Immunogenität des KEL1-Antigens ist dessen Erhebung oft Teil der routinemäßigen Spendertypisierung. Am Blutspendezentrum Zürich wird KEL1 serologisch als auch genetisch mittels Hochdurchsatzgenotypisierung bestimmt. Genotyp-Phänotypdiskrepanzen werden normalerweise durch eine aufwendige Sanger-Sequenzierung aller 19 Exons gelöst, welche jedoch keine Erstellung von Haplotypen zulässt. Hier präsentieren wir ein alternatives Vorgehen, das auf der neuesten Sequenzierungstechnologie von Oxford Nanopore Technologies basiert und die Generierung von Haplotypen ganzer Gene ermöglicht.

Zur Ermittlung der KEL1-Expression kamen serologische Standardmethoden zur Anwendung. Vier Varianten innerhalb des KEL-Gens waren Teil der auf MALDI-TOF Massenspektrometrie basierenden Hochdurchsatz genotypisierung, darunter c.578C>T, welches die KEL1/2-Expression bestimmt. Die Bestätigung diskrepanter Ergebnisse erfolgte mittels PCR-SSP und serologischen Untersuchungen zur Antigenexpressionsstärke wie Adsorptions-Elutionsanalysen und Durchflusszytometrie. Zur Auflösung einer Diskrepanz bei einem Spender amplifizierten wir das ~21 kb lange KEL mit zwei sich um 4.4 kb überlappenden «long-range» PCRs von 12.7 kb und 14.3 kb Länge. Die Überlappung war dabei für die Haplotypisierung wesentlich. Die Nanopore-Sequenzierung der PCR-Amplifikate erfolgte auf einer Flongle flow cell, und die detektierten exonischen Varianten wurden durch Sanger-Sequenzierung bestätigt.

Wir identifizierten einen heterozygoten KEL*01/02-Blutspender mit einem KEL:-1,2 (K-k+) Phänotyp. Diese Diskrepanz wies auf ein Null-Allel (KEL*01N) hin. Die Analyse der Probe ergab eine bisher bei der ISBT noch nicht beschriebene Missense-Variante in Exon 11 (c.1241C>A, p.Thr414Lys, rs1384232704), welche dem KEL*01-Allel zugeordnet werden konnte. Da kein KEL1-Antigen auf der Oberfläche der Erythrozyten nachweisbar war, wurde die Genvariante als Null-Allel definiert.

Mit Hilfe der Nanopore-Sequenzierung konnten wir eine Diskrepanz zwischen Genotyp und Phänotyp innerhalb kurzer Zeit auflösen und ein neues KEL*01N-Allel beschreiben. Die Long-Read Technologie vereinfachte maßgeblich die Haplotypisierung des KEL-Gens und dies in einem kostengünstigen sowie zeitsparenden Verfahren, welches sich auch für die Abklärung von Genotyp-Phänotypdiskrepanzen in vielen anderen Blutgruppensystemen eignet.

Abstract

Since the KEL1 antigen of the Kell blood group system is very immunogenic, it is usually determined in routine donor typing. At our blood service in Zurich, KEL1 is determined by both serology and high-throughput genotyping. Genotype-phenotype discrepancies are normally resolved by laborious Sanger sequencing of all 19 exons without haplotype phasing capability. Here, we present an alternative protocol relying on sequencing with Oxford Nanopore Technologies (ONT), which enables the generation of full-gene haplotypes.

Expression of KEL1 antigen was measured by standard serological techniques. Four variants within the KEL gene were part of our MALDI-TOF mass spectrometry based high-throughput blood group genotyping routine, including c.578C>T determining KEL1/2 expression. Genotype-phenotype discrepancies were reassessed by commercially available PCR-SSP kits, adsorption-elution as well as flow cytometry experiments. To resolve a discrepancy in one donor, the entire KEL gene (~21 kb) was amplified in two long-range PCRs (fragments of 12.7 and 14.3 kb, respectively), exhibiting a large overlap (~4.4 kb) essential for haplotype phasing. Amplicons were sequenced on a Flongle flow cell (ONT) and detected exonic variants were confirmed with Sanger sequencing.

We identified a heterozygous KEL*01/02 blood donor with a KEL:-1,2 (K-k+) phenotype. This discrepancy pointed to a null allele (KEL*01N) as no KEL1 antigen could be detected on the erythrocyte surface. A few minutes of Nanopore sequencing already yielded enough data for reliable variant calling. A heterozygous variant in the overlap sequence allowed complete gene haplotype phasing. In exon 11, we identified a missense variant c.1241C>A (p.Thr414Lys, rs1384232704), which was phased to the KEL*01 allele. The variant was yet undescribed, despite the over 100 alleles collected by the ISBT, and was confirmed by Sanger sequencing.

Using Nanopore sequencing, we resolved a genotype-phenotype discrepancy within short turnaround time and discovered a novel KEL*01N allele. The long reads allowed phasing of detected variants to the respective KEL*01/02 background and even constructing full-length KEL haplotypes. The use of a protocol and flow cell optimized for single-sample analysis kept time and expenses competitive. Overall, our approach proved very promising for resolving genotype-phenotype discrepancies in many blood group systems.



Publication History

Article published online:
21 August 2024

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Georg Thieme Verlag KG
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  • Literatur

  • 1 van Dijk EL, Naquin D, Gorrichon K. et al. Genomics in the long-read sequencing era. Trends Genet 2023; 39: 649-71
  • 2 Liao WW, Asri M, Ebler J. et al. A draft human pangenome reference. Nature 2023; 617: 312-24
  • 3 Olivucci G, Iovino E, Innella G. et al. Long read sequencing on its way to the routine diagnostics of genetic diseases. Front Genet 2024; 15: 1374860
  • 4 Thun GA, Gueuning M, Mattle-Greminger M. Long-Read Sequencing in Blood Group Genetics. Transfus Med Hemotherapy 2023; 50: 184-97
  • 5 Redman CM, Marsh WL. The Kell blood group system and the McLeod phenotype. Semin Hematol 1993; 30: 209-218
  • 6 Meyer S, Trost N, Frey BM. et al. Parallel Donor Genotyping for 46 Selected Blood Group and 4 Human Platelet Antigens Using High-Throughput MALDI-TOF Mass Spectrometry. In: Bugert P, Hrsg. Molecular Typing of Blood Cell Antigens. New York: Springer New York; 2015: 51-70
  • 7 Chen S, Francioli LC, Goodrich JK. et al. A genomic mutational constraint map using variation in 76,156 human genomes. Nature 2024; 625: 92-100
  • 8 Lee S, Zambas E, Green ED. et al. Organization of the gene encoding the human Kell blood group protein. Blood 1995; 85: 1364-70
  • 9 Ji Y, Veldhuisen B, Ligthart P. et al. Novel alleles at the Kell blood group locus that lead to Kell variant phenotype in the Dutch population. Transfusion 2015; 55: 413-21
  • 10 Lee S, Russo DC, Reiner AP. et al. Molecular defects underlying the Kell null phenotype. J Biol Chem 2001; 276: 27281-9
  • 11 Gueuning M, Thun GA, Trost N. et al. Resolving Genotype–Phenotype Discrepancies of the Kidd Blood Group System Using Long-Read Nanopore Sequencing. Biomedicines 2024; 12 DOI: 10.3390/biomedicines12010225.
  • 12 Thun GA, Gueuning M, Sigurdardottir S. et al. Novel regulatory variant in ABO intronic RUNX1 binding site inducing A 3 phenotype. Vox Sang 2024; DOI: 10.1111/vox.13580.
  • 13 Shao LN, Xia YX, Yang YC. et al. PacBio Third-Generation Sequencing Reveals an ABO Gene Promoter Mutation, c.-35_-18del, Leading to Weakened B Antigen Expression. Ann Lab Med 2024; DOI: 10.3343/alm.2024.0069.
  • 14 Gueuning M, Thun GA, Wittig M. et al. Haplotype sequence collection of ABO blood group alleles by long-read sequencing reveals putative A1-diagnostic variants. Blood Adv 2023; 7: 878-92
  • 15 Fichou Y, Berlivet I, Richard G. et al Defining Blood Group Gene Reference Alleles by Long-Read Sequencing: Proof of Concept in the ACKR1 Gene Encoding the Duffy Antigens. Transfus Med Hemotherapy 2020; 47: 23-32
  • 16 Srivastava K, Khil PP, Sippert E. et al. ACKR1 Alleles at 5.6 kb in a Well-Characterized Renewable US Food and Drug Administration (FDA) Reference Panel for Standardization of Blood Group Genotyping. J Mol Diagnostics 2020; 22: 1272-9
  • 17 Tounsi WA, Lenis VP, Tammi SM. et al. Rh Blood Group D Antigen Genotyping Using a Portable Nanopore-based Sequencing Device: Proof of Principle. Clin Chem 2022; 68: 1196-201
  • 18 Gilpatrick T, Lee I, Graham JE. et al. Targeted nanopore sequencing with Cas9-guided adapter ligation. Nat Biotechnol 2020; 38: 433-8
  • 19 Payne A, Holmes N, Clarke T. et al. Readfish enables targeted nanopore sequencing of gigabase-sized genomes. Nat Biotechnol 2021; 39: 442-50
  • 20 Miller DE, Sulovari A, Wang T. et al. Targeted long-read sequencing identifies missing disease-causing variation. Am J Hum Genet 2021; 108: 1436-49
  • 21 Gleadall NS, Veldhuisen B, Gollub J. et al. Development and validation of a universal blood donor genotyping platform: A multinational prospective study. Blood Adv 2020; 4: 3495-506
  • 22 Guo Y, Busch MP, Seielstad M. et al. Development and evaluation of a transfusion medicine genome wide genotyping array. Transfusion 2019; 59: 101-11
  • 23 Möller M, Jöud M, Storry JR. et al. Erythrogene: a database for in-depth analysis of the extensive variation in 36 blood group systems in the 1000 Genomes Project. Blood Adv 2016; 1: 240-9
  • 24 Montemayor C, Simone A, Long J. et al. An open-source python library for detection of known and novel Kell, Duffy and Kidd variants from exome sequencing. Vox Sang 2021; 116: 451-63