Bedeutung der morphologischen Analyse von Eizellen und Embryonen in der Reproduktionsmedizin

Kernaussagen

Der Schlüssel zum Erfolg bei der assistierten Reproduktionsmedizin liegt in der Auswahl derjenigen Embryonen mit den besten Implantationspotenzialen. Die gängigste Methode ist bis heute die Erfassung morphologischer Kriterien vom Eizell- bis zum Blastozystenstadium durch das Mikroskop. Das frühzeitige Erkennen derjenigen Embryonen mit guter Schwangerschaftsprognose erlaubt es, nur wenige Embryonen (1–2) zu transferieren und somit die Gefahr höhergradiger Mehrlingsschwangerschaften zu reduzieren.

Der Istanbuler Konsensus-Workshop der Alpha Scientists in Reproductive Medicine und die ESHRE Special Interest Group Embryology [1] hat die Weichen gestellt, um ein international einheitliches Scoring-System zur Beurteilung von Eizellen und frühen Embryonen zu etablieren. Dieses System soll für Publikationen und Studien genutzt werden. Eizell- und Embryonenmetabolismus wird Gegenstand künftiger Forschung sein.

Neue Methoden wie das Time-Lapse-Imaging sind ein wichtiger Schritt von statischer zu kinetischer Beurteilung der frühen Embryonalentwicklung. Die Automatisierung dieser Methode wird die Beobachtung der Embryonen vereinheitlichen.

• Literatur

• 1 Alpha Scientists in Reproductive Medicine and ESHRE Special Interest Group Embryology. Istanbul Consensus workshop on embryo assessment: Proceedings of an expert meeting. Reproductive Biomedicine Online 2011; 632-646
• 2 Beier HM. Die molekulare Biologie der Befruchtungskaskade und der beginnenden Embryonalentwicklung. Ann Anat 1992; 174: 491-508
• 3 Cruz M, Gadea B, Garrido N et al. Embryo quality, blastocyst and ongoing pregnancy rates in oocytes donation patients whose embyos were monitored by time-lapse imaging. J Assist Reprod Gent 2011; DOI: 10.1007/s10815-95491.
• 4 Daya S, Gunby J. Recombinant versus urinary follicle stimulating hormone for ovarian stimulation in assisted reproduction. Hum Reprod 1999; 14: 2207-2215
• 5 Dietrich K, Felberbaum R, Baumann P. Assistierte Reproduktion: Ein Überblick. Gynäkologe 1996; 29: 413-419
• 6 Ebner T, Moser M, Tews G. Die Bedeutung der Morphologie der Oozyte hinsichtlich ihres weiteren Entwicklungspotentials. J Reproduktionsmed Endokrinol 2006; 3: 17-23
• 7 Edwards RG, Steptoe PC. Control of human ovulation, fertilization and implantation. Proc R Soc Med 1974; 67: 932
• 8 Felberbaum R, Dietrich K. Klinischer Einsatz der GnRH-Analoga im Rahmen der Sterilitätstherapie: Agonisten und Antagonisten. Gynäkologe 1996; 29: 420-432
• 9 Felberbaum R, Bühler K, van der Ven H. Das Deutsche IVF-Register 1996 – 2006. Heidelberg: Springer Medizin Verlag; 2007
• 10 Greuner M, Winkler S, Maxrath B et al. Charakterisierung des morphologischen Entwicklungspotenzials von der Oozyte bis zum Embryo. J Reproduktionmed Endokrinol 2012; 9: 13-17
• 11 Herrero J, Alberto T, Ramsing NB et al. Linking successful implantation with the exact timing of cell division events obtained by time-lapse system in the embryoscope. Fert Steril 2010; 94: 149
• 12 Herrler A, Beier HM. Die Beurteilung der Eizellreifung und frühen Embryonalentwicklung bei der assistierten Reproduktion. Reproduktionsmedizin 1998; 14: 131-142
• 13 Katz-Jaffe MG, Gardner DK. Can proteomics help to shape the future of human assisted conception?. Reprod Biomed Online 2008; 17: 497-501
• 14 Lopata A, Johnston IWH, Leeton JF et al. Collection of human oocytes at laparoscopy and laparotomy. Fertil Steril 1974; 25: 1030-1038
• 15 Meng Y, Liu XH, Ma X et al. The protein profile of mouse mature cumulus-oocyte complex. Biochim Biophys Acta 2007; 1774: 1477-1490
• 16 Montag M, van der Ven H. Evaluation of pronuclear morphology as the only selection criterion for further embryo culture and transfer: results of a prospective multicentre study. Hum Reprod 2001; 16: 2384-2389
• 17 Nagy ZP, Sakkas D, Behr B. Non-invasive assessment of embryo viability by metabolomic profiling of culture media (‘metabolomics ). Reprod Biomed Online 2008; 17: 502-507
• 18 Ramsing NB, Bernsten J, Callesen H. Automated detection of cell division and movement in time-lapse-images of developing bovine embryos can improve selection of viable embryos. Fertil Steril 2007; 88: S138
• 19 Rijnders PM, Jansen CA. The predictive value of day 3 embryo morphology regarding blastocyst formation, pregnancy and implantation rate after day 5 transfer following in-vitro fertilization or intracytoplasmic sperm injection. Hum Reprod 1998; 13: 2869-2873
• 20 Scott L, Alvero R, Leondiris R, Miller B. The morphology of human pronuclear embryos is positively related to blastocyst development and implantation. Hum Reprod 2000; 15: 2394-2403
• 21 Scott L. Pronuclear scoring as a predictor of embryo development. Reprod Biomed Online 2003; 6: 201-214
• 22 Terriou P, Giorgetti C, Hans E et al. Relationship between even early cleavage and day 2 embryo score and assessment of their predictive value for pregnancy. Reprod Biomed Online 2007; 14: 294-299
• 23 Tesarik J, Kopecny V. Assembly of the nucleolar precursor bodies in human male pronuclei is correlated with early RNA synthetic activity. Exp Cell Res 1990; 191: 153-156
• 24 Thurin A, Hausken J, Hillensjö T et al. Elective single-embryo transfer versus double-embryo transfer in vitro fertilisation. N Engl J Med 2004; 351: 2392-2402
• 25 Wang Y, Puscheck EE, Lewis JJ et al. 2005: Increases in phosphorylation of SAPK/JNK and p 38MAPK correlate negatively with mouse embryo development after culture in different media. Fertil Steril 2005; 83: 1144-1154
• 26 Zhu H, Bilgin M, Snyder M. Proteomics. Ann Rev Biochem 2003; 72: 783-812