Geburtshilfe Frauenheilkd 2003; 63(10): 1040-1046
DOI: 10.1055/s-2003-42734
Originalarbeit

Georg Thieme Verlag Stuttgart · New York

Isolierung und Transplantation mesenchymaler Stammzellen aus Nabelschnurblut

Isolation and Transplantation of Human Mesenchymal Stem Cells From Cord BloodB. Tanner 1 , W. Beerheide 2 , O. Jensen 2 , M. A. von Mach 3 , M. Ringel 4 , C. Fleckenstein 4 , S. Schumann 4 , N. Renzing 4 , A. Hildebrand 4 , S. Neubert 1 , C. Glawatz 1 , J. G. Hengstler 4
  • 1Universitätsfrauenklinik Mainz, Universität Mainz
  • 2Cytonet-Heidelberg, Heidelberg
  • 3II. Medizinische Klinik der Universität Mainz
  • 4Institut für Toxikologie der Universität Mainz
Further Information

Publication History

Eingang Manuskript: 6. Februar 2003 Eingang revidiertes Manuskript: 27. Juni 2003

Akzeptiert: 27. Juni 2003

Publication Date:
10 October 2003 (online)

Zusammenfassung

Fragestellung

Es existieren Hinweise, dass mesenchymale, adhärent wachsende, adulte Stammzellen aus Nabelschnurblut prinzipiell zur Differenzierung in mehrere Gewebeentitäten in der Lage sind. Entsprechend groß ist das Interesse an Techniken zur Präparation, Konservierung und Differenzierung mesenchymaler Stammzellen. In der vorliegenden Arbeit untersuchten wir das Schicksal von mesenchymalen Stammzellen aus Nabelschnurblut nach der Transplantation in einen intakten Leberzellverband. Es sollte die Frage geklärt werden, ob mesenchymale Stammzellen im Fremdgewebe überleben, sich vermehren und möglicherweise Eigenschaften des umgebenden Gewebeverbandes annehmen.

Material und Methodik

Mesenchymale Stammzellen wurden aus Nabelschnurblut gewonnen und in das Lebergewebe von 12 SCID-Mäusen transplantiert. Der Verbleib der Stammzellen wurde durch ihre Färbung mit dem Fluoreszenzfarbstoff PKH26 sowohl 7 Tage als auch 21 Tage nach der Transplantation überprüft. Die Expression von humanem Albumin, α1-Antitrypsin, GATA4, α-Fetoprotein, β2-Mikroglobulin und β-Aktin wurde in den Stammzellen vor und nach der Transplantation durch Immunhistochemie und RT-PCR untersucht und verglichen.

Ergebnisse

Nach der Transplantation konnten in allen 12 Mäusen PKH26-positive, fluoreszierende, intakte Zellen nachgewiesen werden. Die Zahl der fluoreszierenden Strukturen war nach 21 Tagen größer als nach 7 Tagen. Die Expression von humanem Albumin konnte durch einen spezifischen monoklonalen Antikörper immunhistochemisch ausschließlich nach der Transplantation nachgewiesen werden. Dieser Befund wurde durch RT-PCR bestätigt.

Schlussfolgerung

Humane mesenchymale Stammzellen aus Nabelschnurblut überleben und proliferieren nach der Transplantation in das Lebergewebe von Mäusen. In diesem Zusammenhang kommt es zu einer Veränderung der Genexpression der Stammzellen, die Ausdruck einer Anpassung an die Wirtszellen ist. Die Ergebnisse lassen hoffen, dass sich Stammzellen aus Nabelschnurblut in der Zukunft für die Entwicklung von speziellen Gewebeentitäten für den Organersatz als geeignet erweisen. Einschränkend muss jedoch festgestellt werden, dass die transplantierten Stammzellen zwar einige lebertypische Marker exprimierten (z. B. Albumin), jedoch nicht alle (z. B. GATA4). Ob dies eine grundsätzliche Einschränkung darstellt oder auf Interspezies-Inkompatibilitäten beruht, müssen weiterführende Untersuchungen zeigen.

Abstract

Purpose

There is evidence that mesenchymal somatic stem cells isolated from cord blood have the capability to differentiate into different tissues. Strategies to isolate, cryopreserve and differentiate mesenchymal stem cells are of high interest. We examined survival, proliferation and transdifferentiation of human mesenchymal stem cells transplanted into healthy mouse livers.

Methods

Mesenchymal stem cells isolated from human cord blood were transplanted into the livers of 12 SCID mice. Liver tissue was stained for stem cells with the fluorescent dye PKH26 7 and 21 days after transplantation. Expression of human albumin, α1-antitrypsin, GATA4, α-fetoprotein, β2 microglobulin and β-actin in stem cells was studied before and after transplantation with immunohistochemistry and RT-PCR.

Results

PKH-positive, fluorescent, intact cells were identified in the livers of all 12 transplanted mice. More PKH26-positive cells were seen after 21 than after 7 days. Expression of human albumin in mouse liver tissue was demonstrated immunohistochemically with a specific monoclonal antibody and confirmed with RT-PCR.

Conclusion

Human mesenchymal stem cells isolated from cord blood can survive, proliferate and transdifferentiate after transplantation into mouse liver tissue. This may have therapeutic applications in the future. It appears that gene expression by the transplanted stem cells adapts to the host tissue. The transplanted stem cells express some, but not all genes typically expressed in liver (for instance albumin but not GATA4). It is not clear whether this is due to an inherent limitation of these stem cells to transdifferentiate or to interspecies incompatibilities between humans and mice.

Literatur

  • 1 Gluckman E. Umbilical cord blood transplant in human.  Hematol Cell Ther. 1996;  38 393-397
  • 2 Michalopoulos G K, DeFrances M C. Liver regeneration.  Science. 1997;  276 60-66
  • 3 Phillips B W, Belmonte N, Vernochet C, Ailhaud G, Dani C. Compactin enhances osteogenesis in murine embryonic stem cells.  Biochem Biophys Res Commun. 2001;  284 478-484
  • 4 Wobus A M, Kaomei G, Shan J O, Wellner M C, Rohwedel J, Ji-Guanju B, Fleischmann A, Katus A, Hescheler J, Franz W M. Retinoic acid accelerates embryonic stem cell-derived cardiac differentiation and enhances development of ventricular cardio-myocytes.  J Mol Cell Cardiol. 1997;  29 1525-1539
  • 5 Westmoreland J J, Hancock C R, Condie B G. Neuronal development of embryonic stem cells: a model of GABEergic neuron differentiation.  Biochem Res Commun. 2001;  284 674-680
  • 6 Erices A, Conget P, Minguell J J. Mesenchymal progenitor cells in human umbilical cord blood.  Br J Haematol. 2000;  109 235-242
  • 7 Gutierrez-Rodriguez M, Reyes-Maldonado E, Mayani H. Characterization of the adherent cells developed in Dexter-type long-term cultures from human umbilical cord blood.  Stem Cells. 2000;  18 36-52
  • 8 Mareschi K, Biason E, Piacibello W, Aglietta M, Madon C, Fagiolo F. Isolation of human mesenchymal stem cells: bone marrows versus umbilical cord blood.  Haematologica. 2000;  86 1099-1100
  • 9 Vernet P, Fischer J. Knipper A, Degistrici O, Kogler G. Detection of unrestricted multipotential stem cells in human cord blood.  Blood. 2001;  98 550a
  • 10 Ringel M, Oesch F, Bader A, Gerl M, Klebach M, Quint M, Böttger T, Hengstler J G. Permissive and suppressive effects of dexamethasone on enzyme induction in hepatocyte cultures.  Xenobiotica. 2002;  32 653-666
  • 11 Steinberg P, Fischer T, Kiulies S, Biefang K, Platt K-L, Oesch F, Böttger Th, Bulitta C, Kempf P, Hengstler J G. Drug metabolizing capacity of cryopreserved human, rat and mouse liver parenchymal cells in suspension.  Drug Metabol Dispos. 1999;  27 1415-1422
  • 12 Hengstler J G, Ringel M, Biefang K, Hammel S, Milbert Z, Gerl M, Klebach M, Diener B, Platt K L, Böttger T, Steinberg P, Oesch F. Cultures with cryopreserved hepatocytes: Applicability for studies of enzyme induction.  Chem Biol Interact. 2000;  125 51-73
  • 13 Hengstler J G, Utesch D, Steinberg P, Ringel M, Swales N, Biefang K, Platt K L, Diener B, Böttger T, Fischer T, Oesch F. Cryopreserved primary hepatozytes as an in vitro model for the evaluation of drug metabolism and enzyme induction.  Drug Metab Rev. 2000;  32 81-118
  • 14 Bosma M J, Carroll A M. The SCID mouse mutant: definition, characterization, and potential uses.  Annu Rev Immunol. 1991;  9 323-350
  • 15 Hast J, Schiffer I, Neugebauer B, Teichmann E, Schreiber W, Brieger J, Li D W, Gebhard S, Born C J, Strugala M, Sagemüller J, Brenner W, Mann W J, Oesch F, Thelen M, Hengstler J G. Angiogenesis and fibroblast proliferation precede formation of recurrent tumors after radiation therapy in nude mice.  Anticancer Res. 2002;  22 677-688
  • 16 Micke P, Hengstler J G, Ros R, Bittinger F, Metz G, Gebhard S, Beeh K M, Oesch F, Buhl R. c-erbB-2 expression in small cell lung cancer is associated with poor prognosis.  Int J Cancer. 2001;  92 474-479
  • 17 Hengstler J G, Tanner B, Möller L, Vydra M, Oesch F, Meinert R, Kaina B. Activity of methyltransferase in relation to status and therapeutic response in ovarian cancer . .  Int J Cancer. 1999;  84 388-395
  • 18 Hengstler J G, Pilch H, Schmidt M, Dahlenburg H, Sagemüller J, Schiffer I, Oesch F, Knapstein P G, Kaina B, Tanner B. Metallothionein expression in ovarian cancer in relation to histopathologic parameters and molecular markers of prognosis.  Int J Cancer. 2001;  95 121-127
  • 19 Tanner B, Pilch H, Bahlmann F, Kaina B, Hengstler J G. Activity of the DNA-repair enzyme O6-methylguanine-DNA methyltransferase in ovarian cancer.  Geburtsh Frauenheilk. 2002;  62 560-565
  • 20 Tanner B, Pilch H, Schmidt M, Hengstler J G. Expression of metallothionein and glutathione in ovarian carcinomas.  Geburtsh Frauenheilk. 2002;  62 145-154
  • 21 Brenner W, Färber G, Herget T, Lehr H A, Hengstler J G, Thüroff J W. Loss of the tumor suppressor protein PTEN during renal carcinogenesis.  Int J Cancer. 2002;  99 53-57
  • 22 Hengstler J G, Kett A, Arand M, Oesch-Bartlomowicz B, Oesch F, Pilch H, Tanner B. Glutathione S-transferase T1 and M1 gene defects in ovarian carcinoma.  Cancer Letters. 1998;  130 43-48
  • 23 Hengstler J G, Lange J, Kett A, Dornhöfer N, Meinert R, Arand M, Knapstein P G, Becker R, Oesch F, Tanner B. Contribution of c-erbB-2 and topoisomerase IIα to chemoresistance in ovarian cancer.  Cancer Res. 1999;  59 3206-3214
  • 24 Arand M, Mühlbauer R, Hengstler J G, Jäger E, Fuchs J, Winkler L, Oesch F. A multiplex polymerase chain reaction protocol for the simultaneous analysis of the glutathione S-transferase GSTM1 and GSTT1 polymorphisms.  Anal Biochem. 1996;  236 184-186
  • 25 Nahon J L, Tratner I, Poliard A, Presse F, Poiret M, Gal A, Sala-Trepat J M, Legres L, Feldmann G, Bernuau D. Albumin and alpha-fetoprotein gene expression in various non-hepatic rat tissues.  J Biol Chem. 1988;  263 11436-11442
  • 26 Gobin S JP, van Zutphen M, Westerheide S D, Boss J M, van den Elsen P J. The MHC-specific enhanceosome and its role in MHC class I and beta2-microglobulin gene transactivation.  J Immunol. 2001;  167 5175-5184
  • 27 Blumberg R S, van de Wal Y, Claypool S, Corazza N, Dickinson B, Nieuwenhuis C, Pitman R, Spiekerman B, Zhu X, Colgan S, Lencer W I. The multiple roles of major histocompatibility complex class-I-like molecules in mucosal immune function.  Acta Odontol Scand. 2001;  59 139-144
  • 28 Beerheide W, Mach M A, Ringel M, Fleckenstein C, Schumann S, Renzing N, Hildebrand A, Brenner W, Jensen O, Gebhard S, Reifenberg K, Bender J, Oesch F, Hengstler J G. Downregulation of β2-microglobulin in human cord blood somatic stem cells after transplantation into livers of SCID-mice: an escape mechanism of stem cells?.  Biochem Biophys Comm. 2002;  294 1052-1063
  • 29 Alison M R, Inderbitzin T, Aoki T, Tyan D B, Cohen A H, Ferraresso C, Rozga J, Arnout W S, Demetriou A A. Isolation, characterization, and transplantation of bone marrow-derived hepatocyte stem cells.  Biochem Biophys Commun. 2001;  288 156-164
  • 30 Mach M A. Primary biliary cirrhosis in classmates: Coincidence or enigmatic environmental influence?.  EXCLI J. 2002;  1 1-7
  • 31 Hengstler J G, Heimerdinger C K, Schiffer I B, Gebhard S, Sagemüller J, Tanner B, Bolt H M, Oesch F. Dietary topisomerase II-poisons: contribution of soy products to infant leukemia?.  EXCLI J. 2002;  1 8-14
  • 32 Mach M A, Schlosser J, Weiland M, Feilen P J, Ringel M, Hengstler J G, Weilemann L S, Beyer J, Kann P, Schneider S. Cryopreservation of islets of Langerhans: Optimization of Protocols.  EXCLI J. 2003;  2 6-21

Priv.-Doz. Dr. B. Tanner

Universitätsfrauenklinik Mainz
Institut für Toxikologie

Langenbeckstraße 1

55131 Mainz

    >