Download PDF
Thromb Haemost 1968; 19(03/04): 533-539
DOI: 10.1055/s-0038-1651232
Originalarbeiten – Original Articles – Travaux Originaux
Schattauer GmbH

Eine semiquantitative immunologische Methode zur Fibrinolysebestimmung

D Karitzky
1   Aus der Universitäts-Kinderklinik Freiburg i. Br. (Direktor: Prof. Dr. W. Künzer)
,
W Künzer
1   Aus der Universitäts-Kinderklinik Freiburg i. Br. (Direktor: Prof. Dr. W. Künzer)
› Author Affiliations
Further Information

Publication History

Publication Date:
27 June 2018 (online)

Also available at
    Permissions and Reprints

Zusammenfassung

Es wurde untersucht, ob die Menge der bei der Fibrinolyse freiwerdenden Polypeptide ein Maß für die Spontanfibrinolyse in vitro darstellt. Es zeigte sich, daß innerhalb 24 Std. nur ein antikörperpositives Polypeptid abgespalten wurde. Dieses wies in der immunelektrophoretischen Analyse β2-Beweglichkeit auf. Die Methode eignet sich zur semiquantitativen Bestimmung der Spontanfibrinolyse in kleinen Plasmamengen.

 

  • Literatur

  • 1 Nussenzweig G.V, Seligmann M, Pelmont J, Grabar P. Les produits de dégradation du fibrinogène humain par la plasmine.. Ann. Inst. Pasteur 1961; 100: 377
    PubMedGoogle Scholar
  • 2 Karitzky D, Künzer W. Herstellung eines monospezifischen Antiserums gegen menschliches Fibrinogen.. Thrombos. Diathes. haemorrh. (Stuttg.) 1967; 18: 532
    PubMedGoogle Scholar
  • 3 Ouchterlony O. Diffusion-in-gel methods for immunological analysis.. Progr. Allergy 1958; 5: 1
    PubMedGoogle Scholar
  • 4 Grabar P, Williams C.A. Méthode permettant l’étude conjugée des propriétés électrophoré-tiques et immunochimiques d’un mélange de proteines.. Biochim. biophys. Acta (Amst.) 1953; 10: 193
    CrossrefPubMedGoogle Scholar
  • 5 Scheidegger J.J. Une micro -méthode de l’immunoélectrophorèse.. Int. Arch. Allergy 1955; 7: 103
    CrossrefPubMedGoogle Scholar
  • 6 Mancini G, Vaermann J.P, Garbonara A.O, Heremans J.F. A single radial diffusion method for the imm.unological quantitation of proteins. Proc. 11 th. Colloqu. Protides of the, Biological Fluids Brügge.. Elsevier; Amsterdam: 1964: 1963
    Google Scholar
  • 7 Störiko K. Immunologische Methoden zur Bestimmung von Plasmaproteinen.. Ärztl. Lab 1965; 11: 189
    PubMedGoogle Scholar
  • 8 Beller F.K, Maki M. Properties of fibrinogenolysis and fibrinolysis products in immune assays.. Thrombos. Diathes. haemorrh. (Stuttg.) 1967; 18: 114
    PubMedGoogle Scholar
  • 9 Berglund G. Immunoelectrophoretic studies of fibrinogen, plasmin and lytic products of fibrinogen and fibrin.. Int. Arch. Allergy 1962; 21: 193
    CrossrefPubMedGoogle Scholar
  • 10 Seligmann M. Possibilité d’étude immunochimique de la fibrinolyse.. Rev. franç. Étud. clin. biol 1958; 3: 1073
    PubMedGoogle Scholar
  • 11 Schwick G, Kranz Th, Schmidtberger R, Störiko K. Zur Immunologie des Fibrinogens und seiner Spaltprodukte.. Behringwerke-Mitteil 1964; 43: 213
    PubMedGoogle Scholar
  • 12 Alkjaersig N, Fletcher A.P, Sherry S. Pathogenesis of the coagulation defect developing during pathological plasma proteolytic activity (»fibrinolytic«) state II.. J. clin. Invest 1962; 41: 917
    CrossrefPubMedGoogle Scholar
  • 13 Storb U, Corvazier P, Künzer W. Fetales Fibrinogen. IV. Mitteilung: Untersuchungen zum immunologischen und physikochemischen Verhalten des Neugeborenen-Fibrinogens.. Klin. Wschr 1965; 43: 488
    CrossrefPubMedGoogle Scholar
  • 14 Beck E.A, Jackson D.P. Studies on the degradation of human fibrinogen by plasmin and trypsin.. Thrombos. Diathes. haemorrh. (Stuttg.) 1966; 16: 526
    PubMedGoogle Scholar
  • 15 Halse Th. Fibrinolyse.. ed Cantor; Freiburg: 1948: i Br.
    Google Scholar